Способ получения побегов льна-долгунца in vitroПатент на изобретение №: 2282352 Автор: Белоногова Марина Анатольевна (RU), Ралдугина Галина Николаевна (RU) Патентообладатель: Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева (RU) Дата публикации: 27 Августа, 2006 Начало действия патента: 29 Апреля, 2005 Адрес для переписки: 127276, Москва, ул. Ботаническая, 35, Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН, патентная служба Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу получения побегов льна-долгунца. Проводят инкубацию семян на агаризованной питательной среде с модифицированным составом в темноте с целью получения проростков. Из полученных проростков приготовляют экспланты и инкубируют их на свету в течение 20-70 часов на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга. Далее получают побеги путем инкубации эксплантов на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга. Изобретение позволяет получить высокие значения общей частоты побегообразования, а также побеги высокого качества. 1 табл. Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способам генетической инженерии, и может быть использовано как в сельском хозяйстве, а также и для фундаментальных исследований в области физиологии растений. Известен способ получения побегов рапса in vitro, включающий инкубацию семян на агаризованной питательной среде с получением проростков, приготовление эксплантов в виде цельных семядолей из полученных проростков, инкубацию приготовленных эксплантов на агаризованной питательной среде с получением побегов (Ралдугина Г.Н., Соболькова Г.Н. Факторы, влияющие на органогенез у семядольных эксплантов рапса // Физиология растений, 1995, т.42, N6, с.916-922). Однако известно, что попытки достичь получения побегов на эксплантах семядолей льна-долгунца не имели успеха (Dedicova В., Hricova A., Samaj J., Obert В., Bobak M., Pretova A. Shoots and embryo-like structures regenerated from cultured flax (Linum usitatissimum L.) hypocotyl segments // J. Plant Physiology, 2000, v.157, p.327-334). Наиболее близким аналогом предлагаемого способа - прототипом является известный способ получения побегов льна in vitro, включающий инкубацию семян в темноте на агаризованной питательной среде с получением проростков, приготовление эксплантов из полученных проростков, инкубацию эксплантов на свету на агаризованной питательной среде, содержащей 6-бензиламинопурин и нафтилуксусную кислоту, с получением побегов (Каляева Н.М., Захарченко Н.С., Бурьянов Я.И. Особенности регенерации льна-долгунца (Linum usitatissimum L.) // Биотехнология, 2000, №6, с.34-40). В этом способе для инкубации семян используют агаризованную безгормональную среду Мурасиге-Скуга (МС). (Murashige Т., Scoog P., 1962. A reserved medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology plantarum, v.15, p.473-497). Семена инкубируют на этой среде 14 суток в темноте с получением проростков. Из полученных проростков готовят экспланты в виде сегментов гипокотилей. Для получения побегов экспланты инкубируют на свету на среде МС, дополненной регуляторами роста: 6-бензиламинопурином - 1 мг/л и нафтилуксусной кислотой 0,01-0,1 мг/л. Однако образование побегов на сегментах гипокотиля происходит по всей поверхности экспланта, преимущественно из эпидермальных клеток. Это снижает эффективность использования известного способа при проведении генетической трансформации при помощи Agrobacterium tumefacience, так как для агробактериальной трансформации необходимо образование побегов вокруг раневой поверхности. При использовании сегментов гипокотиля для увеличения числа побегов, образующихся вокруг раневой поверхности, при проведении генетической трансформации, часть эпидермиса необходимо удалять тонкими полосками вдоль экспланта, что значительно увеличивает трудоемкость способа. Задачей настоящего изобретения является повышение выхода побегов вокруг раневой поверхности, получаемых из эксплантов льна-долгунца, при высокой общей частоте побегообразования и высоком качестве получаемых побегов, при упрощении способа и снижении его трудоемкости. Задача решается новым способом получения побегов льна-долгунца in vitro, включающий инкубацию семян на агаризованной питательной среде в темноте с получением проростков, приготовление эксплантов из полученных проростков, инкубацию эксплантов на свету на агаризованной питательной среде, содержащей 6-бензиламинопурин, с получением побегов, причем семена инкубируют в темноте в течение 1-3 суток, а затем продолжают инкубацию на свету - 3-7 суток на агаризованной питательной среде, содержащей, мг/л: KNO3 900-1000NH4 NO3800-850 MgSO4×7H 2O180-190 Сахароза4500-5500 Агар6950-7050экспланты готовят в виде цельных семядолей, их дополнительно инкубируют в темноте в течение 20-70 часов на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга, дополненной, мг/л: Нафтилуксусная кислота 1,9-2,1Кинетин 3,9-4,12,4-дихлорфеноксиуксусная кислота0,098-0,11 Агар6950-7050с получением подготовленных эксплантов, а для получения побегов полученные подготовленные экспланты инкубируют на свету на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга при содержании, мг/л: ZnSO4×4H 2O9-10 Н3BO4 17-19Тиамин-HCl 9,5-10,56-бензиламинопурин 1-2Агар6950-7050до получения побегов. Заявленные пределы определяются следующим образом: ниже и выше заявленных пределов способ показывает плохие результаты. Ниже приведены примеры №1-6 реализации способа. В примерах использованы следующие варианты сред. Среда №1а для инкубации семян, содержащая, мг/л: KNO3 900NH4NO 3800MgSO 4×7H2O180 Сахароза4500 Агар6950 ВодаОстальноеСреда №1б для инкубации семян, содержащая, мг/л: KNO3 1000NH4NO 3850MgSO 4×7H2O190 Сахароза5500 Агар7050 ВодаОстальноеСреда №2а для дополнительной подготовки эксплантов, агаризованная модифицированная питательная среда МС, дополненная, мг/л: Нафтилуксусная кислота 1,9Кинетин3,9 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота 0,098Агар 6950Среда №2б для дополнительной подготовки эксплантов, агаризованная модифицированная питательная среда МС, дополненная, мг/л: Нафтилуксусная кислота 2,1Кинетин4,1 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота 0,11Агар 7050Среда №3а для инкубации подготовленных эксплантов, агаризованная модифицированная питательная среда МС, при содержании, мг/л: ZnSO4×4H 2O9Н 3BO417 Тиамин-HCl9,5 6-бензиламинопурин1 Агар6950Среда №3б для инкубации подготовленных эксплантов, агаризованная модифицированная питательная среда МС, при содержании, мг/л: ZnSO4×4Н 2О10Н 3BO419 Тиамин-HCl10,5 6-бензиламинопурин2 Агар7050Пример 1. Семена льна-долгунца сорта Белоснежка инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 20 часов на агаризованной питательной среде №2а, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 2. Семена льна-долгунца сорта Белоснежка инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 70 часов на агаризованной питательной среде №2б, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Пример 3. Семена льна-долгунца сорта А-29 инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 20 часов на агаризованной питательной среде №2а, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 4. Семена льна-долгунца сорта А-29 инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 70 часов на агаризованной питательной среде №2б, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Пример 5. Семена льна-долгунца сорта Ленок инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 20 часов на агаризованной питательной среде №2а, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 6. Семена льна-долгунца сорта Ленок инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, которые дополнительно инкубируют в темноте в течение 70 часов на агаризованной питательной среде №2б, а подготовленные экспланты затем инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Ниже приведены примеры №7-12, показывающие, что без дополнительной подготовки эксплантов способ показывает плохие результаты. Пример 7. Семена льна-долгунца сорта Белоснежка инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 8. Семена льна-долгунца сорта Белоснежка инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Пример 9. Семена льна-долгунца сорта А-29 инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 10. Семена льна-долгунца сорта А-29 инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Пример 11. Семена льна-долгунца сорта Ленок инкубируют in vitro в течение 1 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 3 суток на агаризованной питательной среде №1а, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3а до получения побегов. Пример 12. Семена льна-долгунца сорта Ленок инкубируют in vitro в течение 3 суток в темноте с последующей инкубацией на свету в течение 7 суток на агаризованной питательной среде №1б, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде цельных семядолей, затем экспланты инкубируют на свету на агаризованной питательной среде №3б до получения побегов. Пример 13 (по прототипу). Семена льна-долгунца сорта А-29 инкубируют in vitro в темноте течение 14 суток на агаризованной питательной среде МС, с получением проростков, из которых готовят экспланты в виде 4-6 мм сегментов гипокотилей, затем экспланты до получения побегов инкубируют на свету на агаризованной питательной среде МС дополненной 6-бензиламинопурином - 1 мг/л и нафтилуксусной кислотой 0,05 мг/л. Результаты, плученные по примерам 1-13, приведены в таблице. Таблица СортНомер примера Общая частота побегообразования, * % Частота побегообразования вокруг раневой поверхности, ** % Пример по изобретению Белоснежка1 9191 26464 А-293 1241244 7272 Ленок581 81657 57Пример без дополнительной инкубации на среде №2 для подготовки эксплантов Белоснежка7 2121 81111 А-299 313110 1212 Ленок119 91210 10Пример по прототипу А-2913 954 * Общая частота побегообразования определяется следующим образом: отношение количества образовавшихся побегов к общему количеству эксплантов, умноженное на 100%. ** Частота побегообразования вокруг раневой поверхности определяется следующим образом: отношение количества образовавшихся побегов вокруг раневой поверхности к общему количеству эксплантов, умноженное на 100%.Результаты, представленные в таблице, свидетельствуют о том, что способ согласно изобретению позволяет в 18-30 раз повысить частоту побегообразования вокруг раневой поверхности, что имеет существенное значение при использовании этого способа при проведении генетической трансформации при помощи Agrobacterium tumefacience, так как перенос генов осуществляется в клетки вокруг раневой поверхности. Снижается трудоемкость способа за счет исключения операции по специальной обработке для увеличения раневой поверхности путем удаления части эпидермиса. Способ согласно изобретению прост в использовании и высокотехнологичен. В результате способа согласно изобретению общая частота побегообразования зависит от генотипа, однако для всех сортов при реализации способа согласно изобретению были получены высокие значения общей частоты побегообразования, получаемые побеги высокого качества, все результаты стабильны и воспроизводимы. Формула изобретенияСпособ получения побегов льна-долгунца in vitro, включающий инкубацию семян на агаризованной питательной среде в темноте с получением проростков, приготовление эксплантов из полученных проростков, инкубацию эксплантов на свету на агаризованной питательной среде, содержащей 6-бензиламинопурин с получением побегов, отличающийся тем, что семена инкубируют в темноте в течение 1-3 суток, а затем продолжают инкубацию на свету 3-7 суток на агаризованной питательной среде, содержащей, мг/л: KNO3 945-955NH4 NO3823-827 MgSO4×7H 2O183-187 Сахароза4950-5050 Агар6950-7050экспланты готовят в виде цельных семядолей, их дополнительно инкубируют в темноте в течение 20-70 ч на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга, дополненной, мг/л: Нафтилуксусная кислота 1,9-2,1Кинетин 3,9-4,12,4-Дихлорфеноксиуксусная кислота0,098-0,11 Агар6950-7050с получением подготовленных эксплантов, а для получения побегов полученные подготовленные экспланты инкубируют на свету на агаризованной модифицированной питательной среде Мурасиге-Скуга, при содержании, мг/л: ZnSO4×4H 2O9-10 Н3BO4 17-19Тиамин-HCl 9,5-10,56-Бензиламинопурин 1-2Агар6950-7050до получения побегов. MM4A - Досрочное прекращение действия патента СССР или патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе Дата прекращения действия патента: 30.04.2007 Извещение опубликовано: 27.12.2008 БИ: 36/2008 Популярные патенты: 2163071 Способ определения потенциальной соленостной толерантности водных беспозвоночных ... После 2 недель акклимации определяли их устойчивость к пониженной солености. Для этого беспозвоночных рассаживали по 10 экземпляров в 1-литровые стаканы с водой пониженной солености и определяли их смертность через 2 суток. По полученным данным рассчитывали величины LC(50), которые составили: Соленость акклимации - LC(50) 20.4 - 4.2 13.6 - 2.9 8.9 - 2.1 6.0 - 1.65 4.1 - 1.55 2.6 - 1.2 1.9 - 0.95 1.3 - 0.97 Линия регрессии, описывающая изменение значения LC(50) в зависимости от солености акклимации и рассчитанная по вышеприведенным данным, имела вид: Y = 0.168X + 0.701, где Y - LC(50), а X - соленость акклимации. Она пересекала линию "y = x" в точке с соленостью 0.8 г/л, которая и ... 2130247 Замкнутый пневмосепаратор ... 6 (фракция отходов). Воздушный поток, проходя через жалюзийную решетку и противоточную часть воздухоочистителя 18, захватывает трудноосаждаемые частицы (пыль, мучку) и вместе с ними поступает в колесо диаметрального вентилятора 7. При выходе из колеса частицы под действием центробежных сил отбрасываются к периферии и, двигаясь по кожуху 12 выхлопного диффузора 8, попадают во входной участок 11 канала 10 частичного отвода запыленного воздуха. Далее частицы под действием нагнетательно-всасывающего потока воздуха поступают по каналу 10 в отвод 4 пневмосепарирующего канала 2 и вместе с основным потоком воздуха снова направляются в осадочную камеру 5 и инерционный ... 2027346 Лесозаготовительная машина ... отмера длин выполнены в виде попарно установленных основного передающего элемента по заданной координате выпиливаемого лесоматериала и дополнительного передающего элемента изменения скорости перемещения каретки протаскивающего механизма, смещенных относительно друг друга в продольном направлении балки, при этом дополнительный передающий элемент изменения скорости расположен между захватно-сучкорезной головкой и соответствующим ему основным передающим элементом датчика, а управляющий элемент датчиков расположен на горизонтальной поверхности каретки, обращенной к балке для поочередного взаимодействия с одним из передающих элементов датчиков. 2. Машина по п.1, отличающаяся тем, что ... 2051553 Устройство для обезвоживания навоза ... бункера под подающим шнеком и корпуса под прессующим шнеком выполнен паз, в котором с образованием зазора расположен один из связанных с вибратором стержней. Поэтому навоз обезвоживается даже во время его перемещения к фильтрующим элементам. Перфорированное днище короба выполнено из двух упругих стержней, установленных по бортам короба и соединенных с вибратором. На упругих стержнях перпендикулярно продольной оси короба закреплены фильтрующие элементы с фиксированным зазором между собой. Происходит повышенное водоотделение из навоза при движении его поперек щелей. Благодаря этому уменьшена длина короба. Самоочистка щелей происходит за счет изменения их размеров при колебаниях. В ... 2051575 Способ отделения дождевых червей от среды обитания и устройство для его осуществления ... питательной среды. Устройство включает средства для перемещения емкости, выполненные в виде подвижной рамы, которая расположена на направляющих, при помощи роликов, а направляющие установлены перпендикулярно транспортеру. Средство воздействия на питательную среду выполнены в виде ванны с водой. Рама снабжена винтовым подъемным механизмом с возможностью перемещения ящиков в вертикальной плоскости и снабжена захватом и зацепами, расположенными с возможностью контакта с первой группой микропереключателей, которая сблокирована с приводами тележек подъемного механизма. Вторая группа микропереключателей установлена с обеих сторон направляющих по перемещению водвижной рамы с ... |
Еще из этого раздела: 2399200 Устройство для обработки роговых образований животных, например крупного рогатого скота 2469534 Перезаряжаемая электронная ловушка для животных с перегородкой, механическим переключателем в конфигурации с множеством поражающих пластин 2167510 Способ и устройство для изготовления круглых тюков соломы или подобного материала с пленочным защитным покрытием 2432394 Ингибирование образования биогенного сульфида посредством комбинации биоцида и метаболического ингибитора 2066320 Производные тиазола, способ их получения и способ борьбы с грибками 2075926 Устройство для группового учета молока на доильных установках 2020793 Способ выращивания растений и стаканчик для его осуществления 2189708 Машина для формирования гребней 2420060 Способ генетической трансформации растений селекционно-ценных образцов клевера лугового 2065260 Гидравлическая система самоходной сельскохозяйственной машины |