Способ получения биомассы энтомопатогенных нематодПатент на изобретение №: 2168893 Автор: Данилов Л.Г., Айрапетян В.Г., Салятов Л.Ю. Патентообладатель: Всероссийский институт защиты растений, Общество с ограниченной ответственностью "Городской учебно- консультационный центр" Дата публикации: 20 Июня, 2001 Начало действия патента: 21 Марта, 2000 Адрес для переписки: 189620, Санкт-Петербург, Пушкин, ш. Подбельского 3, ВИЗР ИзображенияИзобретение относится к микробиологической промышленности, а именно к способу получения биомассы энтомопатогенных нематод. В способе используют искусственную питательную среду, которую наносят на твердый инертный носитель. Питательная среда состоит из следующих компонентов, %: соевая мука 16, растительное масло 5, пивные дрожжи 1, вода 50, поролоновая крошка 8. Инокуляцию чистой культуры симбиотических бактерий и моноксенной культуры нематод в питательную среду проводят одновременно, а также с дополнительным внесением адаптогена - дибазола (2-бензил-бензимидазол) в концентрации 110-9 г/мл искусственной питательной среды. Добавление дибазола в питательную среду способствует повышению резистентности организмов к неблагоприятным условиям культивирования при совместной инокуляции. Емкости с питательной средой инкубируют в течение 20 - 30 дней при 20 - 28В°С. Культуру нематод выделяют вымыванием из поролоновой крошки. Выход биомассы нематод в способе составил 920,0 тыс. инвазионных личинок с 1 г питательной среды. При этом показатель энтомопатогенной активности нематод составил LD50 = 22,0 + 2,7. 2 табл. ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУИзобретение относится к микробиологической промышленности, а именно к способам получения биомассы энтомопатогенных нематод, применяемых в качестве биологических препаратов в борьбе с насекомыми-вредителями. Известен способ получения биомассы энтомопатогенных нематод, который заключается в том, что компоненты питательной среды - яичный порошок, дрожжи, кукурузное масло, соевую муку и воду смешивают, помещают в ферментер и стерилизуют. В охлажденную смесь инокулируют предварительно размноженную на питательном бульоне в другом ферментере жидкую культуру симбиотических бактерий. После 48-часового выращивания бактерий в питательную среду инокулируют предварительно простерилизованную моноксенную культуру инвазионных личинок нематод. Зрелую биомассу нематод после завершения цикла развития отделяют от остатков питательной среды с помощью центрифугирования (1). В качестве недостатков культивирования нематод в жидкой питательной среде в ферментерах следует отметить следующие: длительный срок развития нематод - до 60 дней; низкий выход биомассы, не превышающий 106 инвазионных личинок с 1 мл питательной среды; большая энергоемкость процесса культивирования. Наиболее близким из известных, принятым за прототип, является способ, включающий получение биомассы нематод с использованием полужидких питательных сред, состоящих из следующих компонентных составов: а) куриные потроха, говяжий жир и вода; б) куриные яйца, кукурузная мука, растительное масло, дрожжевой экстракт и вода (2). Гомогенатом питательной среды пропитывают поролоновую крошку, в которую после стерилизации инокулируют симбиотических бактерий. Бактерии размножают при температуре 25-30oC в течение 2-3 суток, затем в емкость со средой с бактериями инокулируют моноксенную культуру нематод. Недостатки прототипа определяются наличием двух разновременных операций, проводимых с одними и теми же емкостями с питательной средой в стерильных условиях - сначала инокулируют в питательную среду бактерий, а затем нематод. И кроме того, при таком способе размножения нематод с 1 г питательной среды получают невысокий выход биомассы этих паразитов (не более 450 тысяч), что существенно отражается на эффективности всего процесса производства и себестоимости продукта. Задача, решаемая изобретением, - повышение выхода биомассы энтомопатогенных нематод и снижение себестоимости конечного продукта. Предлагаемый способ заключается в том, что микроорганизмы, в частности, энтомопатогенные нематоды и их симбиотические бактерии выращивают в емкостях с естественной аэрацией на твердом инертном носителе - поролоновой крошке (объем кусочков поролоновой крошки - 1-6 см), пропитанной гомогенатом искусственной питательной среды, состоящей из следующих компонентов: соевая мука - 16%, растительное масло (кукурузное, рапсовое, подсолнечное) - 5%, пивные дрожжи - 1%, вода - 50%, поролоновая крошка - 8% с дополнительным внесением адаптогена - дибазола (2-бензил-бензимидазол) в концентрации 1 10-9 г/мл искусственной питательной среды при одновременной инокуляции в питательную среду симбиотических бактерий и моноксенной культуры инвазионных личинок нематод. Добавление дибазола в питательную среду способствует повышению резистентности организмов к неблагоприятным условиям культивирования, отличающимся от условий развития нематод в насекомых. Первоначальный процесс культивирования начинают с приготовления чистой культуры симбиотических бактерий и моноксенной культуры (т.е. культуры инвазионных личинок нематод, с одним видом бактерий - симбиотических) нематод. Чистую культуру симбиотических бактерий получают путем заражения нематодами гусениц большой вощинной моли (Galleria mellonella L.), спустя 24 часа в стерильных условиях отбирают бактерии, содержащиеся в гемолимфе насекомых, и переносят их в чашки Петри с питательным агаром (дрожжевой экстракт - 10 г, декстроза - 5 г, CaCO3 - 20 г, агар - 15 г, вода - 1 л). После суточной инкубации при температуре 25-30oC отбирают колонии бактерий и инокулируют их в колбы с МПБ, которые помещают на качалку на 2 суток при температуре 25-30oC. Моноксенную культуру нематод получают путем стерилизации инвазионных личинок нематод в 0,1% растворе мертиолата в течение 30 минут, затем их переносят в свежий 0,1% раствор мертиолата и держат 3 часа, после чего личинок трижды промывают в стерильной воде и переносят в чашки Петри на питательный агар с двухсуточной культурой симбиотических бактерий и инкубируют при 25-28oC. Когда размножение нематод прекращается (обычно спустя 20- 30 суток), полученную моноксенную культуру нематод используют для размножения их на искусственной питательной среде. В производственных условиях чистые субкультуры симбиотических бактерий хранят на питательном агаре при температуре 12oC и проверяют их на чистоту ежемесячно. Эти культуры используют затем в процессе производства, а моноксенную культуру нематод берут из емкостей, в которых нематоды завершили цикл развития из расчета 1 г поролоновой крошки с нематодами на 10 г поролоновой крошки с питательной средой. В процессе производства искусственную питательную среду смешивают в отдельной емкости (соевую муку, яичный порошок, растительное масло, пивные дрожжи, воду). Полученной гомогенной массой пропитывают поролоновую крошку, которую затем помещают в емкости и автоклавируют при температуре 121oC и давлении 1 атм в течение 30 минут. В охлажденную питательную смесь в стерильных условиях инокулируют, в расчете на 1 г среды, жидкую двухсуточную культуру симбиотических бактерий (12,1 107 бактериальных клеток) и моноксенную культуру нематод (50 тыс. инвазионных личинок). Емкости с питательной средой инкубируют в течение 20-30 дней при температуре 20-28oC. Зрелую культуру нематод выделяют из инертного носителя в воде путем вымывания и последующей концентрации инвазионных личинок с помощью гидроциклона и центрифуги. Подсчетом нематод в определенном объеме осадка определяют численность нематод перед закладкой их на хранение. Пример 1. Получение биомассы нематод вида Steinernema carpocapsae штамм "agriotos" проводили в стеклянных колбах объемом 700 см3 на питательной среде, содержащей: соевая мука - 16%, яичный порошок - 20%, кукурузное масло - 5%, пивные дрожжи - 1%, поролоновая крошка - 8%, вода - 50% с добавлением дибазола в концентрациях 1 10-7 г/мл, 1 10-9 г/мл и 1 10-11 г/мл. Общая масса среды в колбе составляла 70 г. После стерилизации и охлаждения в среду инокулировали микроорганизмы одновременно. В одном контрольном опыте микроорганизмы инокулировали в среду раздельно, сначала симбиотических бактерий вида Xenorhabdus nematophilus, а затем после 48-часовой инкубации среды с бактериями при температуре 25oC дополнительно в среду инокулировали моноксенных личинок нематод. В другом контрольном опыте микроорганизмы инокулировали в среду одновременно. Колбы с питательной средой и микроорганизмами содержали в темноте при температуре 25oC в течение 20 дней. Зрелую культуру нематод выделяли вымыванием из поролоновой крошки и подсчитывали количество нематод в полученной водной суспензии инвазионных личинок в опытных и контрольных вариантах с одновременным определением их инвазионной (энтомопатогенной) активности по показателю LD50 для тест-насекомых (3). Выход биомассы нематод при добавлении дибазола в концентрации 1 10-9 г/мл составил 920,0 тыс. инвазионных личинок с 1 г питательной среды, в контрольном опыте при совместной инокуляции микроорганизмов, соответственно, 646,6 тыс. нематод и в другом контрольном опыте при раздельной инокуляции получено 720,0 тыс. нематод с 1 г среды. С увеличением и уменьшением концентрации дибазола от оптимальной (1 10-9 г/мл) выход биомассы снижался (Таблица 1). При этом наилучший показатель инвазионной (энтомопатогенной) активности нематод (LD50 = 22,0 2,7) - был в варианте с добавлением дибазола к питательной среде в концентрации 1 10-9 г/мл (Таблица 2). С увеличением и уменьшением концентрации дибазола инвазионная активность нематод снижалась. В вариантах без дибазола при раздельном и совместном внесении микроорганизмов в питательную среду показатели LD50 так же были значительно ниже, соответственно, 35,1 4,7 и 38,3 4,5. Таким образом, наилучшие результаты по выходу биомассы нематод и их инвазионной (энтомопатогенной) активности получены при добавлении к питательной среде дибазола в концентрации 1 10-9 г/мл. При этом выход биомассы с 1 г питательной среды за счет применения дибазола и одновременной инокуляции микроорганизмов в питательную среду повышается на 42,3%, что свидетельствует о возможности сокращения трудоемкой операции в процессе производства, связанной с инокуляцией двух микроорганизмов в питательную среду, и тем самым достигается существенное повышение производительности труда, а в целом за счет применения нового способа культивирования достигается увеличение выхода биомассы нематод и значительное снижение себестоимости биомассы нематодных препаратов. Источники 1. Surrey M.R., R.J. Davies (1996). Pilot-scale liquid culture and harvesting of an entomopathogenic nematode, Heterorhabditis bacteriophora. J. Invertebrate Pathologi, Vol.67, N 1, pp. 92-99. 2. Bedding R. A. , M.S. Stanfield, G.W. Crompton (1991). Apparatus fad Method for Rearing Nematodes, Fungi, Tissue Cultures and The Like, and For Harvesting Nematodes. Internacional Patent Application N PCT/AU91/ 00136 48 pp. 3. Веремчук Г.В., Данилов Л.Г. Методические указания по определению инвазионной активности нематодных культур рода Neoaplectana (Steinernematidae). Л., 1978, 7 стр.ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯСпособ получения биомассы энтомопатогенных нематод, включающий нанесение искусственной питательной среды на инертный носитель, инокуляцию чистой культуры симбиотических бактерий и моноксенной культуры инвазионных личинок нематод в питательную среду, выращивание нематод и выделение биомассы инвазионных личинок из носителя, отличающийся тем, что инокуляцию нематод и бактерий в питательную среду проводят одновременно и с дополнительным внесением адаптогена, в качестве которого использован дибазол в концентрации 110-9 г/мл.Популярные патенты: 2197817 Поплавок для рыболовных удочек и снастей ... части в металлический "киль" с кольцом для пропуска лески, позволяет обеспечить вертикальную устойчивость поплавка и размещать и крепить на леске наконечник стационарно, а выполнение патрубков у поплавков с различными объемами воздушных камер с одинаковыми размерами и конусностью наружной поверхности, идентичными внутренним параметрам наконечника, позволяет использовать один наконечник для поплавков с различными объемами воздушных камер. Изменение объема воздушной камеры за счет перемещения поршня позволяет использовать грузовую оснастку на удочках и других снастях не одного постоянного фиксированного веса, а в пределах определенного весового интервала и упростить оснастку ... 2231250 Устройство для промышленного выращивания земляники и других растений ... по М. кл. А 01 G 31/06, 1998 г., патент РФ 2105468 по М. кл. А 01 G 31/06).Ближе всего к настоящему изобретению может быть патент РФ 2105468 “Устройство для промышленного выращивания земляники” по М. кл. А 01 G 31/06.Прототипное устройство содержит каркас, на который крепится вертикально расположенная растильня в виде двустороннего многослойного растительного поля (с несущей сеткой, светопоглощающей и светоотражающей пленками), внутренний слой которого выполнен гигроскопическим. Устройство также имеет систему подачи питательного раствора рециркуляторного типа с биофильтром, двумя резервуарами, поддоном, систему освещения, санпропускник, систему кондиционирования с использованием ... 2452165 Высевающий аппарат зерновой сеялки с централизованным дозированием семян ... цилиндров витки с левосторонней навивкой, а в другой паре - с правосторонней, а основания внешних цилиндров надеты на концевые части приемных камер.2. Высевающий аппарат зерновой сеялки с централизованным дозированием семян по п.1, отличающийся тем, что между парами цилиндров установлен U-образный щиток с выгрузным окном.3. Высевающий аппарат зерновой сеялки с централизованным дозированием семян по п.1, отличающийся тем, что дозирующее устройство выполнено с возможностью вращения с различной частотой. 4. Высевающий аппарат зерновой сеялки с централизованным дозированием семян по п.1, отличающийся тем, что на концевые части приводного вала установлены ворошилки. MM4A Досрочное ... 2092004 Композиционный состав для обработки растений и их органов ... кислоты 0,005-0,15; жидкие макроэлементы 1,0-45,0; микроэлементы 0,1-2,0; 1-этоксисилатран 0,001-0,01; средство защиты растений 0,1--20,0; вода остальное. 2 з.п.ф-лы, 1 табл. , , ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ПАТЕНТУ Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано для обработки семян, клубней и вегетативных органов растений. Современная интенсивная технология возделывания сельскохозяйственных культур предусматривает широкое использование различного вида композиционных составов для обработки растений и их органов. Например, разработан гидрофобизирующий пленкообразующий состав, содержащий протравитель. Этот состав в настоящее время не ... 2295848 Способ дезинсекции и дезинфекции материалов зернового происхождения и устройство для его осуществления ... и верхнем днище узла ввода СВЧ энергии, а в этом днище и на периферии наконечника выполнены ориентированные вдоль оси устройства отверстия, формирователь вихревого газового потока размещен на конусном переходе, и в боковой стенке разрядной камеры выполнены запредельные на частоте используемых электромагнитных волн отверстия в плоскости, расположенной примерно на половине высоты разрядной камеры. Для реализации возможности использования энергии постоянного электрического тока внутренний проводник основного узла ввода СВЧ энергии изолирован от остальных частей устройства, а вокруг разрядной камеры установлен соленоид, стабилизирующий процессы протекания тока в ... |
Еще из этого раздела: 2453091 Способ обработки почвы 2312500 Способ защиты смородины от вредителей и болезней 2296457 Устройство для магнитно-импульсной обработки растений 2192734 Устройство для производства прессованных кип из корней лекарственных растений 2192721 Орудие для обработки засоленных почв 2114107 Производные триазола, способ их получения и инсектоакарицидная композиция 2278503 Способ управления формированием качества виноградного вина 2475025 Средство для обработки семян зерновых и зернобобовых культур, пораженных фузариозом 2297128 Способ мелиорации солонцовых почв в условиях орошения 2216923 Способ выращивания льна-долгунца |