Способ получения форм картофеля сорта скороплодный in vitro, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофторозаПатент на изобретение №: 2505955 Автор: Юрьева Наталья Олеговна (RU), Кирсанова Светлана Николаевна (RU), Соболькова Галина Ивановна (RU), Деревягина Марина Константиновна (RU), Голденкова-Павлова Ирина Васильевна (RU), Шимшилашвили Христина Романовна (RU), Лось Дмитрий Анатольевич (RU) Патентообладатель: Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук (ИФР РАН) (RU), Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова Российской академии наук (ИОГЕН РАН) (RU) Дата публикации: 10 Февраля, 2014 Начало действия патента: 14 Мая, 2012 Адрес для переписки: 127276, Москва, ул. Ботаническая, 35, ФГБУН Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук (ИФР РАН), Патентная служба Изобретение относится к области биотехнологии и генной инженерии, в частности к способам получения трансгенных форм картофеля in vitro сорта Скороплодный, устойчивых к абиотическим и биотическим стрессам. Изобретение представляет собой создание нового способа получения форм картофеля in vitro сорта Скороплодный, устойчивых к абиотическим и биотическим стрессам. Изобретение позволило повысить устойчивость к низким отрицательным температурам (-10°С) у 52,5% трансгенных линий (почти полное отсутствие повреждений), а также у 56,25% трансгенных линий повысилась устойчивость к жаре (+28 -+32°С). Кроме того, 17,5% трансгенных линий показали устойчивость как к температурным стрессам, так и к возбудителю фитофтороза при сохранении его сортовых признаков. Заявленный способ менее трудоемок и снижает затраты времени с 10-15 лет до 4-6 лет до получения форм, которые в дальнейшем могут быть переданы на государственное сортоиспытание. 4 табл. Область применения Изобретение относится к области биотехнологии и генной инженерии, в частности к способам получения трансгенных форм картофеля сорта Скороплодный in vitro, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза, и может быть использовано для создания новых форм сортов картофеля, способных давать стабильный урожай в разных почвенно-климатических зонах. Уровень техники Известен способ получения раннеспелого сорта картофеля Скороплодный, который был получен традиционным способом селекции (Каталог Всероссийского научно-исследовательского института картофельного хозяйства им. А.Г.Лорха, стр.28). Недостатком этого способа является то, что сорт картофеля Скороплодный является среднечувствительным к низким отрицательным, повышенным положительным температурам и фитофторозу. Кроме того, высокая устойчивость к возбудителю фитофтороза коррелирует с низкой клубневой продуктивностью. Очень трудно получить формы картофеля, сочетающие все три признака методом традиционной селекции. Кроме того, метод традиционной селекции трудоемок и ведет к большим затратам времени (10-15 лет). Задача изобретения Задачей изобретения является создание нового способа получения форм картофеля сорта Скороплодный in vitro, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза, позволяющего преодолеть недостатки традиционной селекции при сохранении его сортовых признаков. Решение задачи Поставленная задача решается созданием нового способа получения форм картофеля сорта Скороплодный in vitro, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза, заключающегося в том, что стеблевые и листовые экспланты, вычлененные из тридцатидневных асептических растений исходного сорта, помещают в чашки Петри с жидкой средой следующего состава: Макросоли по Мурасиге-Скугу (МС) 50,0 мл/л,Микросоли по МС 1,0 мл/л,CaCl 2348,5 мг/л Fe - хеллат по МС5,0 мл/л Тиамин1,0 мг/л Пиридоксин1,0 мг/л Глюкоза16,0 г/лГидролизат козеина 1,0 г/лМезоинозит 100,0 мг/лНафтилуксусная кислота (НУК)5,0 мг/л Бензиламинопурин0,2 мг/л Дистиллированная вода до 1 л средырН 5,8и прединкубируют в течение 18-24 часов и температуре 22-24°С, затем вносят пипеткой 300 мкл на одну чашку ночной суспензионной культуры агробактерии, несущей плазмиду с геном ацил-липидной 9-десатуразы из цианобактерии Synechococcus vulcanus, кокультивируют с агробактериальной суспензией в течение 15-30 минут при периодическом встряхивании, обсушивают между листами стерильной фильтровальной бумаги и помещают в другие чашки Петри с аналогичной средой и посткокультивируют в течение 18-24 часов при температуре 22-24°С на рассеянном свету, затем экспланты таким же образом обсушивают и переносят в чашки Петри с аналогичной средой с добавлением 7 г/л агара и 800 мг/л цефотаксима и инкубируют в течение 5-7 суток на рассеянном свету при 22-24°С, затем переносят на регенерационные среды состава: Макросоли по МС50,0 мл/лМикросоли по МС 1,0 мл/лCaCl2 348,5 мг/лFe - хеллат по МС 5,0 мл/лТиамин 1,0 мг/лПиридоксин 1,0 мг/лГлюкоза 16,0 г/лГидролизат козеина1,0 г/л Мезоинозит100,0 мг/л Биотин1,0 мг/л Кальций пантетонат5,0 мг/л Аденинсульфат40,0 мг/л НУК0,1 мг/л Зеатин2,0 мг/л* Цефотаксим800,0 мг/л*Агар 7,0 г/лДистиллированная вода до 1 л среды рН5,8* Добавлять после автоклавирования (холодной стерилизации) и культивируют в течение 10-14 суток при 22-25°С и освещенности 6000-10000 лк, затем культивируют на аналогичной среде с цефотаксимом 500 мг/л и канамицин сульфатом 15 мг/л 3 пассажа по 21 дню, затем культивируют 1 пассаж без канамицина сульфата и снова 3 пассажа с канамицин сульфатом, при появлении регенерантов размером не менее 10 мм их срезают и переносят на среду состава: Макросоли по МС50,0 мл/лМикросоли по МС 1,0 мл/лCaCl2 348,5 мг/лFe - хеллат по МС 5,0 мл/лТиамин 1,0 мг/лПиридоксин 1,0 мг/лСахароза 20,0 г/лКанамицин сульфат50,0 мг/л* Цефотаксим200,0 мг/л* Агар7,0 г/л Дистиллированная водадо 1 л среды рН5,8*Добавлять после автоклавирования; затем проводят первый этап отбора: срезанные регенеранты культивируют на среде МС с 50 мг/л канамицин сульфатом в течение 30-45 дней при 22-25°С и освещенности 6000-10000 лк при 16-часовом фотопериоде, далее отбирают укоренившиеся регенеранты картофеля с зелеными листьями и стеблями, потом проводят второй этап отбора: укоренившиеся растения проверяют методом ПЦР (Метод создания конструкций, метод ПЦР-анализа: «Генная инженерия растений», лабораторное руководство, Москва, «Мир», 1991, под редакцией Дж.Дрейпера, Р.Скотта, Ф.Армитиджа, Р.Уолдена, стр.304-383) на наличие вставки целевой ДНК и регенеранты с подтвержденной ПЦР вставкой целевой ДНК размножают микрочеренкованием для проведения дальнейших исследований. Сущность изобретения Сущность изобретения заключается в том, что встройка плазмиды с вектором экспрессии, содержащим ген ацил-липидной 9-десатуразы из цианобактерии Synechococcus vulcanus, в экспланты картофеля сорта Скороплодный обеспечивает повышение устойчивости картофеля одновременно к низким отрицательным, повышенным положительным температурам и к возбудителю фитофтороза. Новизна изобретения Новизной изобретения является весь процесс получения заявляемых форм картофеля. При получении трансгенных форм картофеля сорта Скороплодный заявляемым способом происходит повышение общего адаптационного потенциала растения картофеля. Выход за заявленные пределы При прединкубации эксплантов менее 18 часов не накапливается достаточного числа клеток на нужной стадии клеточного цикла, способных акцептировать целевую ДНК. Увеличение длительности прединкубации более 24 часов ведет к гибели эксплантов. Температура прединкубации ниже 22°С и выше 24°С ведет к уменьшению числа клеток, способных акцептировать целевую ДНК. При кокультивации с агробактериальной суспензией менее 15 минут частота встройки целевой ДНК очень низка. При кокультивации свыше 30 минут происходит гибель эксплантов вследствие избыточного заражения агробактерией. При посткокультивации менее 18 часов частота встроек низка, а более 24 часов приводит к гибели эксплантов вследствие избыточного заражения агробактерией, что приводит к загниванию тканей. При посткокультивации при температуре менее 22°С уменьшается число клеточных делений и частота встроек низка. Посткокультивация при температуре выше 24°С приводит к гибели эксплантов вследствие избыточного заражения агробактерией. Добавление цефотаксима необходимо для того, чтобы подавить рост агробактерии, чтобы предотвратить гибель эксплантов. При инкубировании на рассеянном свету менее 5 суток не удается получить достаточное число клеток, готовых к морфогенезу. Инкубирование более 7 суток приводит к обильному каллусообразованию, что, в свою очередь, приводит к повышению самоклональной вариабельности, что затрудняет выявление форм картофеля с целевой ДНК. Температура 22-24°С оптимальна для процесса клеточных делений. При культивировании менее 10 суток не все клетки со встройкой успевают перейти к регенерации, что удлиняет процесс получения регенерантов. Удлинение же этого периода более 14 суток приводит к снижению уровня цитокинина (зеатина) в среде и гибели эксплантов. Данный температурный интервал 22-24°С и световой режим - освещенность 6000-10000 лк и 16-часовой фотопериод являются оптимальным для регенерации растений картофеля. Культивирование на регенерационной среде с цефотаксимом менее 500 мг/л приводит к обильному росту агробактерии и гибели эксплантов, а более высокие концентрации цефотаксима токсичны для регенерирующих тканей. При концентрации канамицин сульфата ниже 15 мг/л (1/3 летальной дозы для сорта Скороплодный) регенерируют клетки в том числе и без целевой встройки. При культивировании в течение более трех пассажей накапливается предельное содержание канамицин сульфата в тканях, которое может привести к гибели эксплантов, а культивирование в течение 1 пассажа без канамицина сульфата (в течение 21 дня) приводит к снижению концентрации канамицин сульфата в тканях, что позволяет более интенсивно размножаться клеткам со встройкой целевого гена. При срезании и перенесении регенерантов размером менее 10 мм на среду для укоренения с канамицин сульфатом происходит замедление укоренения, роста и гибель побега. Результаты исследования полученных растений представлены в таблицах 1, 2, 3, 4. Таблица 1 Состояние трансгенных растений картофеля сорта Скороплодный через 2-е суток после 2-часовой экспозиции при -10°С (оценено 40 трансгенных линий по 5 растений на вариант) Степень поврежденияХарактер повреждения Число линий% линий ОтсутствуетОтсутствует 1640,0 НизкаяПотеря тургора 1/ 4 листьев512,5 Средняя - на уровне исходного сорта СкороплодныйПотеря тургора >1 /3 листьев4 10,0Высокая Потеря тургора и мацерация 1/4 листьев и стеблей растений15 37,5 Таблица 2 Состояние побега 16 трансгенных линий растений картофеля сорта Скороплодный, выделившихся по устойчивости к замораживанию, после их выращивания при +28-+32°С в течение 102 дней на среде МС при освещенности 10000 люкс Длина побегаЧисло линий % линий2 раза больше, чем у исходного сорта531,25 1,5 раза больше, чем у исходного сорта 956,25Длина побега у растений исходного сорта уменьшилась почти в 2 раза после температурного стресса, по сравнению с выращиванием при оптимальной температуре (+23-+25°С). Таблица 3 Состояние корня 16 трансгенных линий растений картофеля сорта Скороплодный, выделившихся по устойчивости к замораживанию, после их выращивания при +28-+32°С в течение 102 дней на среде МС при освещенности 10000 люкс Состояние корня (балл)Число линий (шт.) % линийОчень хорошее развитие корня (9 баллов)1 6,25Хорошее развитие корня (7 баллов)4 25,0Среднее развитие корня (5 баллов)743,75 Развитие корня ниже среднего (3 балла) на уровне исходного сорта Скороплодный2 12,5Отсутствие корня (1 балл)212,5 Таблица 4 Показатели устойчивости к фитофторозу 16-ти выделившихся трансгенных линий растений картофеля сорта Скороплодный, которые были высажены в теплицу и оценены на устойчивость к возбудителю фитофтороза (Phytophthora infestans) с использованием традиционного метода искусственного заражения отделенных листьев (Методика ВНИИКХ) 2009 годВыделившиеся трансгенные линииПоказатель устойчивости (балл) 8771(1)6,8* 8172(2)6,3* 8418(1a)6,7* 8418(1)6,2* 8593(4)5,9* 9100(5)5,9* 9100(6)6,1* 8593(2)6,0 9026(2)5,5 8594(1)6,3 8347(2)5,6 8891(4)5,9 9099(14)4,9 9026(3)5,2 8309(1)6,1 Сорт Скороплодный (исходный сорт) 5,2Восприимчивый стандарт сорт Жуковский ранний4,2 Стандарт с высокой устойчивостью сорт Никулинский 7,0 *линии, выделившиеся по устойчивости к экстремальным температурам Результаты изобретения Как следует из результатов таблиц 1, 2, 3 и 4, заявленный способ получения трансгенных форм картофеля in vitro сорта Скороплодный, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза, позволяет повысить устойчивость к низким отрицательным температурам (-10°С) у 52,5% трансгенных линий (почти полное отсутствие повреждений), а также у 56,25% трансгенных линий повысилась устойчивость к жаре (+28-+32°С). Кроме того, 17,5% трансгенных линий показали устойчивость как к температурным стрессам, так и к возбудителю фитофтороза при сохранении его сортовых признаков. Заявленный способ менее трудоемок, чем традиционная селекция и снижает затраты времени с 10-15 лет до 4-6 лет до получения форм, которые в дальнейшем могут быть переданы на государственное сортоиспытание. Формула изобретенияСпособ получения форм картофеля сорта Скороплодный in vitro, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза, заключающийся в том, что стеблевые и листовые экспланты, вычлененные из тридцатидневных асептических растений сорта «Скороплодный», помещают в чашки Петри с жидкой средой следующего состава: Макросоли по Мурасиге-Скугу (МС) 50,0 мл/лМикросоли по МС 1,0 мл/лCaCl2 348,5 мг/лFe - хеллат по МС 5,0 мл/л Тиамин 1,0 мг/л Пиридоксин 1,0 мг/л Глюкоза 16,0 г/л Гидролизат козеина 1,0 г/л Мезоинозит 100,0 мг/л Нафтилуксусная кислота (НУК) 5,0 мг/лБензиламинопурин 0,2 мг/лДистиллированная вода до 1 л среды рН 5,8и прединкубируют в течение 18-24 часов и температуре 22-24° С, затем вносят пипеткой 300 мкл на одну чашку ночной суспензионной культуры агробактерии, несущей плазмиду с геном ацил-липидной 9-десатуразы из цианобактерии Synechococcus vulcanus, кокультивируют с агробактериальной суспензией в течение 15-30 минут при периодическом встряхивании, обсушивают между листами стерильной фильтровальной бумаги и помещают на другие чашки Петри с аналогичной средой и посткокультивируют в течение 18-24 часов при температуре 22-24°С на рассеянном свету, затем экспланты таким же образом обсушивают и переносят в чашки Петри с аналогичной средой с добавлением 7 г/л агара и 800 мг/л цефотаксим сульфата и инкубируют в течение 5-7 суток на рассеянном свету при 22-24°С, затем переносят на регенерационные среды состава: Макросоли по МС 50,0 мл/лМикросоли по МС 1,0 мл/лCaCl2 348,5 мг/лFe - хеллат по МС 5,0 мл/л Тиамин 1,0 мг/л Пиридоксин 1,0 мг/л Глюкоза 16,0 г/л Гидролизат козеина 1,0 г/л Мезоинозит 100,0 мг/л Биотин 1,0 мг/л Кальций пантетонат 5,0 мг/лАденинсульфат 40,0 мг/лНУК 0,1 мг/лЗеатин 2,0 мг/л*Цефотаксим 800,0 мг/л*Агар 7,0 г/лДистиллированная вода до 1 л среды рН 5,8* Добавлять после автоклавированияи культивируют в течение 10-14 суток при 22-25°С и освещенности 6000-10000 лк, затем культивируют на аналогичной среде с цефотаксимом 500 мг/л и канамицин сульфатом 15 мг/л 3 пассажа по 21 дню, затем 1 пассаж без канамицина сульфата и снова 3 пассажа с канамицин сульфатом, при появлении регенерантов размером не менее 10 мм их срезают и переносят на селективную среду состава: Макросоли по МС 50,0 мл/лМикросоли по МС 1,0 мл/лCaCl2 348,5 мг/лFe - хеллат по МС 5,0 мл/л Тиамин 1,0 мг/л Пиридоксин 1,0 мг/л Сахароза 20,0 г/л Канамицин сульфат 50,0 мг/л* Цефотаксим 200,0 мг/л*Агар 7,0 г/лДистиллированная вода до 1 л среды рН 5,8*Добавлять после автоклавирования,затем проводят первый этап отбора форм, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза: срезанные регенеранты культивируют на среде МС с 50 мг/л канамицин сульфатом в течение 30-45 дней при 22-25°С и освещенности 6000-10000 лк при 16-часовом фотопериоде, далее отбирают укрепившиеся регенеранты картофеля с зелеными листьями и стеблями, потом проводят второй этап отбора форм, устойчивых к температурным стрессам и к возбудителю фитофтороза: укоренившиеся растения проверяют методом ПЦР на наличие вставки целевой ДНК и регенеранты с подтвержденной ПЦР вставкой целевой ДНК размножают микрочеренкованием.Популярные патенты: 2241344 Способ производства зеленого корма ... и т.д. по заданному режиму для данного типа растений. Корни растений полностью оплетают частицы цеолита и удерживают антигельминтный препарат. Далее пласт зеленого корма перемещается в зону кормления практически без потерь цеолита и антигельминтика.Согласно проведенным исследованиям, антигельминтный препарат наносят в виде аэрозоля в соответствии с рекомендуемой для данного препарата дозой, а цеолит добавляют к семенам в количестве 1-10%, что позволяет эффективно скармливать зеленый корм. Количество антигельминтика, меньшее рекомендованной дозы, и цеолита, меньшее 1%, не приводит к заметному эффекту повышения качества корма и увеличения производительности данной технологии по ... 2075933 Композиция для иммунизации растений от различных фитопатогенов ... во время вегетации. В частности, при использовании композиции на томатах биологическая активность против вируса-стрика составляла почти 100% и бактериозов (черная бактериальная пятнистость) более 50% Обработка композицией семян томатов сорта Карлсон, а также почвы привело к снижению заражения томатов галловыми нематодами до уровня 36,3% при 100% зараженности контроля. Данные представлены в табл. 8. Пример 4. Сахарная и кормовая свекла. Применение композиции в борьбе с мучнистой росой и церкоспорозом в производственных условиях позволило получить значительную прибавку урожая не менее 20 ц/га. Были проведены испытания защитно-стимулирующего действия композиции в тепличных условиях на ... 2071371 Способ нагрева тканей животного и устройство для его осуществления ... показывает, что поперечное расположение электродов известно [6] однако в предлагаемом устройстве поперечное расположение использовано в новой совокупности конструктивных элементов. Известно также применение электродов разной площади, однако в предлагаемом устройстве применение электродов разной площади приводится в новой совокупности конструктивных признаков и при этом проявляет новое свойство возможность регулирования зоны нагрева и повышения за счет этого эффективности лечения. Это позволяет сделать вывод о соответствии технического решения критерию "существенные отличия". На фиг. 1 схематически изображено взаимное расположение электродов на теле животного и структура поля в ... 2184433 Рабочий орган щелевателя ... боковин 9 и 15. Вкладыши 10-14 между боковинами 9 и 15 образуют пазы. В пазах на фронтальной части стойки 1 установлены с возможностью перемещения и фиксации съемные элементы 2-6. Каждая боковина 9 (15) выполнена единой деталью из листовой стали толщиной 8...12 мм. Боковина 9 и 15 придана Н-образная форма на виде спереди. В пазах на фронтальной части боковин 9 и 15 сверху вниз последовательно размещены правый вертикальный верхний съемный элемент 2 с режущей кромкой, горизонтальный съемный элемент 3 и левый вертикальный нижний съемный элемент 4. Режущая кромка 16 элемента 2 направлена под острым углом к горизонту. Режущая кромка 17 элемента 3 ориентирована под прямым углом к ... 2479988 Способ формирования линейно ориентированного виноградника с капельным орошением (версия 3) ... 4 и позиционно располагают на соответствующем уровне расположения их, после чего выполняют функциональное соединение вертикальной опоры 1 чашеобразного сосуда 10 и вертикальной опоры 1 со сквозными отверстиями 3, в которых на соответствующем уровне последовательно располагают направляющие проволоки 4. При этом чашеобразный сосуд 10 позиционно располагают между нижними частями стеблей 14 винограда. Реализуется предложенный способ формирования линейно ориентированного виноградника с капельным орошением следующим образом. Перед установкой вертикальных опор 1 в виде пластиковых труб дополнительно в закрытом грунте, вдоль линейно ориентированного виноградника устанавливают ... |
Еще из этого раздела: 2452155 Лапа культиватора 2305931 Способ регенерации растений клевера лугового при генетической трансформации 2500104 Способ приготовления препарата костной ткани и набор для его осуществления 2275804 Способ повышения продуктивности птицы 2154940 Способ получения, содержания и хранения живого корма для биологических объектов птиц и рыб 2228022 Способ ведения виноградных кустов 2165134 Корнеподрезающий рабочий орган машины для добычи лакричного сырья 2285375 Способ обработки почвы и устройство для его осуществления 2050341 Устройство для переработки органического субстрата в биогумус 2175189 Способ регенерации растений сорго в культуре in vitro |