Изобретения в сфере сельского хозяйства, животноводства, рыболовства

 
Изобретения в сельском хозяйстве Обработка почвы в сельском и лесном хозяйствах Посадка, посев, удобрение Уборка урожая, жатва Обработка и хранение продуктов полеводства и садоводства Садоводство, разведение овощей, цветов, риса, фруктов, винограда, лесное хозяйство Новые виды растений или способы их выращивания Производство молочных продуктов Животноводство, разведение и содержание птицы, рыбы, насекомых, рыбоводство, рыболовство Поимка, отлов или отпугивание животных Консервирование туш животных, или растений или их частей Биоцидная, репеллентная, аттрактантная или регулирующая рост растений активность химических соединений или препаратов Хлебопекарные печи, машины и прочее оборудование для хлебопечения Машины или оборудование для приготовления или обработки теста Обработка муки или теста для выпечки, способы выпечки, мучные изделия

Штамм гриба phoma complanata (tode) desm. 1.40 (визр), обладающий микогербицидной активностью против борщевика сосновского

 
Международная патентная классификация:       A01N C12N

Патент на изобретение №:      2439141

Автор:      Гасич Елена Леонидовна (RU), Хлопунова Людмила Борисовна (RU), Берестецкий Александр Олегович (RU), Сокорнова Софья Валерьевна (RU)

Патентообладатель:      Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений Российской академии сельскохозяйственных наук (RU)

Дата публикации:      10 Января, 2012

Начало действия патента:      6 Октября, 2010

Адрес для переписки:      196608, Санкт-Петербург, Пушкин, ш. Подбельского, 3, ГНУ ВНИИ защиты растений, патентная группа

Изобретение относится к сельскохозяйственной микробиологии, в частности к области борьбы с растением борщевика Сосновского. Штамм гриба Phoma complanata (Tode) Desm. 32.1211 выделен из листьев борщевика Сосновского (Heracleum sosnowskyi Manden.) и депонирован в Государственной коллекции микроорганизмов ВИЗР под коллекционным номером 1.40 (ВИЗР). Изобретение позволяет бороться с борщевиком Сосновского. 8 табл.

Изобретение относится к сельскохозяйственной микробиологии, в частности к области борьбы с нежелательной растительностью. Представляет собой штамм гриба Phoma complanata (Tode) Desm. 1.40 (ВИЗР), выделенный из листьев борщевика Сосновского (Heracleum sosnowskiy Manden.). Штамм депонирован в Государственной коллекции микроорганизмов ВИЗР, ему присвоен коллекционный номер 1.40 (ВИЗР). Штамм предназначен для борьбы с борщевиком Сосновского и близкородственными видами этого растения.

Северо-западный регион входит в число проблемных в России по распространению борщевика Сосновского. Растение является инвазивным сорняком, быстро заселяющим различные местообитания и вытесняющим местную растительность. Помимо экологических проблем борщевик Сосновского также представляет угрозу для здоровья человека. Все части растения содержат фотосенсибилизирующие соединения фурокумарины, при контакте с человеческой кожей и под воздействием ультрафиолетового излучения сок борщевика вызывает ожоги. В настоящее время для борьбы с борщевиком используются в основном механические и химические методы, которые довольно трудоемки, но не всегда эффективны и безопасны. Новым вкладом в решение этой проблемы может стать использование природных ресурсов: организмов, сдерживающих численность растений в естественных условиях (фитопатогенных микроорганизмов, насекомых-фитофагов) и биологически активных веществ микробного или растительного происхождения (например, фитотоксинов). Среди них фитопатогенные микроскопические грибы изучаются наиболее активно, поскольку они способны вызывать эпифитотии в популяциях растений-хозяев и тем самым контролировать численность сорных растений на определенном уровне.

Несмотря на то что изучению микобиоты борщевика уделялось некоторое внимание, сведения о видовом составе и распространении грибов на борщевике Сосновского и близкородственных видах Heracleum остаются весьма фрагментарными.

По мнению М.K. Seier & N.C. Evans (2007) [8], определенный потенциал как агенты классического контроля Heracleum mantegazzianum могут иметь Phloeospora heraclei (syn.: Cylindrosporium heraclei), Septoria heracleicola, Ramularia heraclei, Ramulariopsis sp., Phomopsis sp., Sclerotinia sclerotiorum. Наиболее подробно изучался фитопатогенный гриб Sclerotinia sclerotiorum. В полевых условиях после обработки растений ранней весной мицелиальной суспензией S. sclerotiorum в конце вегетационного периода отмечалось пожелтение листьев и замедление роста растений по сравнению с контролем (de Voogd et al., 2003, [5]; Emeberg et al., 2003 [6]).

В результате изучения микобиоты видов Heracleum, произрастающих в рудеральных местообитаниях в Ленинградской области, было выявлено 27 видов микромицетов из 19 родов 3-х отделов. На основании результатов экспериментальной работы по изучению патогенности и фитотоксичности выявлен определенный потенциал у штамма 1.40 (ВИЗР) Phoma complanata как агента биологического контроля борщевика Сосновского.

Phoma complanata ранее не изучался как возможный агент биоконтроля борщевика Сосновского. Наиболее близким к предлагаемому и принятому за прототип является Sclerotinia sclerotiorum, патогенность которого к Heracleum mantegazzianum изучалась рядом исследователей (de Voogd et al., 2003 [5]; Erneberg et al., 2003, [6]). Недостатком Sclerotinia sclerotiorum является его широкая специализация, гриб поражает растения многих семейств, что накладывает ограничения на его использование как микогербицида - это возможно только в посевах зерновых культур и злаковых трав, которые к нему устойчивы. Согласно Боерема с соавторами (Boerema et al., 2004, [4]) вид Phoma complanata приурочен к семейству Apiaceae, внутри вида экспериментально установлено наличие специализированных форм.

Задачей изобретения является получение штамма гриба, обладающего микогербицидной активностью и специфичностью для подавления борщевика Сосновского.

Штамм был выделен Е.Л.Гасич из пораженных пятнистостью листьев Heracleum sosnowskyi Manden., собранных в п.Разметелево, Всеволожского р-на Ленинградской области.

Идентификация штамма проводилась по определителю: Boerema G.H., de Gruyter J., Noordeloos M.E., Hamers M.E.C. Phoma identification manual, CABI Publishing, 2004, 470 p [4].

Штамм депонирован в Государственной коллекции микроорганизмов ВИЗР, ему присвоен коллекционный номер 1.40 (ВИЗР). Штамм предназначен для борьбы с борщевиком Сосновского.

Культурально-морфологические особенности штамма.

На картофельно-сахарозном агаре колонии вначале белые, потом бледно-оливково-серые, с точками оливково-черных, шаровидных пикнид. Пикниды 80-240 мкм, с порой, стенки пикниды сложены из 2-6 слоев клеток. Конидии вариабельны по форме и размеру, эллипсоидальные, цилиндрические, веретеновидные, 3-11×1.5-4 мкм, одноклеточные, в свежих культурах иногда встречаются более крупные конидии с 1 перегородкой, 16×4 мкм.

Физиолого-биохимические признаки.

Штамм хорошо растет как на агаризованных средах (картофельно-сахарозный агар, агар Чапека), так и на жидких средах (в стационарной культуре и на качалке).

На среде Чапека максимальный рост отмечен на среде с рамнозой, на втором месте по усвояемости находиться мальтоза, глюкоза и маннит. Из источников азота лучше всего усваивается пептон, несколько хуже усваивается аспарагин и мочевина. Среди источников углерода наибольшая интенсивность спороношения (порядка 107 спор/см2) отмечена на средах с глюкозой, маннитом и арабинозой. На средах с другими источниками азота (кроме рамнозы и сахарозы) интенсивность спороношения составила порядка 106 спор/см2. На средах с рамнозой и сахарозой интенсивность спороношения была на порядок ниже. Интенсивность спороношения на средах с аспарагином, пептоном, мочевиной и нитратом натрия в качестве источников азота составила порядка 106 спор/см2, а на среде с нитратом аммония - порядка 105 спор/см2 (табл.1).

Наибольшая скорость роста штамма 1.40 (ВИЗР) на КСА отмечена при 20°C, несколько ниже она была при 16 и 24°C, при 28°C рост штамма значительно замедлялся, а при 32°C роста не отмечено, при 7°C на 14 сутки диаметр колоний достигал 45,8 мм (табл.2).

Штамм характеризуется высокой интенсивностью спороношения на зерновых субстратах, споровая продуктивность на зерновых субстратах (пшено, перловая, овсяная крупа) составляет порядка 109 спор/г субстрата. Не отмечено повышения интенсивности спороношения под воздействием эритемного и люминесцентного освещения (табл.3).

Хранение штамма осуществляется в пробирках на скошенном картофельно-сахарозном агаре в бытовом холодильнике при температуре +5-8°C в течение 1-1.5 лет без пересева.

Методы использования штамма описаны в примерах, а результаты представлены в таблицах.

Пример. 1. Пример культивирования штамма.

Штамм культивировали по стандартной методике (Наумов, 1937 [2]) на агаризованной картофельно-сахарозной среде (КСА) в чашках Петри при 7, 16, 20, 24, 28, 32°C или на среде Чапека с различными источниками азота и углерода при 24°C в темноте в течение 2-х недель. Зерновые субстраты (пшено, овсяная или перловая крупа) насыпали по 2 г в стеклянные пробирки с ватно-марлевыми пробками, добавляли 2 мл воды и стерилизовали при 1 атмосфере 30 минут, после автоклавирования субстрат перемешивали и инокулировали мицелиально-агаровым блоком, взятым из 14 суточной культуры гриба на КСА. Культуры инкубировали в течение 2-х недель при переменном (12/12 часов) эритемном или люминесцентном освещении, а также в темноте. Споровую суспензию получали методом смыва конидий водой с поверхности культуры, количество спор в суспензии подсчитывали при помощи камеры Горяева. При выращивании на картофельно-сахарозной агаризованной среде при 24°C в темноте в течение 2-х недель с одной чашки Петри выход спор может достигать 3.8×10 8. На зерновых субстратах интенсивность спороношения составляет порядка 109 спор/г субстрата.

Для получения мицелия штамм культивировали на модифицированной среде Чапека или соевой среде в 250 мл колбах с 50 мл среды на качалке при 200 об/мин в течение 3-7 суток. Среду инокулировали 3 мицелиальными агаровыми блоками (диаметр 0.5 см), вырезанными при помощи бура из 14 суточной культуры гриба на картофельно-сахарозной агаризованной среде. Мицелий отфильтровывали через мельничный газ и высушивали до постоянного веса для определения продуктивности, либо для получения мицелиальной суспензии измельчали при помощи блендера. На модифицированной среде Чапека штамм образует многочисленные крупные и мелкие бурые пеллеты, ободок хорошо развит, на ободке и пеллетах многочисленные пикниды, культуральная жидкость бледно-коричневого цвета, споровая продуктивность составляет порядка 106 спор/мл, выход сухой биомассы на 7 сутки культивирования составляет 0.5 г на колбу.

Пример 2. Пример использования штамма.

Патогенность штамма определялась методом искусственного заражения растений борщевика Сосновского. Молодые растения борщевика Сосновского в стадии 2-3 листьев выкапывали в природных условиях и пересаживали в вегетационные сосуды (объемом 200 мл) с почвой. Растения выращивали в лабораторных условиях на светоустановке. Заражение растений проводили через 2 недели после их пересадки. Споровую или мицелиальную суспензию наносили на растения при помощи пульверизатора (5 мл суспензии на сосуд). После инокуляции растения помещали во влажные камеры на 24-48 часов, а затем переносили на светоустановку.

Влияние продолжительности периода повышенной влажности оценивали путем инокуляции растений споровой суспензией с концентрацией 6×10 7 спор/мл. После инокуляции растения помещали во влажные камеры на 0, 6, 24 и 48 часов, а затем переносили на светоустановку.

Оценку патогенности мицелия, полученного в жидкой культуре, осуществляли для целых растений в контролируемых и полевых условиях. Для инокуляции использовали 3-суточную культуру штамма на соевой среде, полученную при глубинном культивировании на качалке. Использовали следующие концентрации инокулюма: 20, 50, 75 и 100 мг/мл. В лабораторных условиях сосуды с растениями после инокуляции помещались на 24 часа во влажные камеры. В полевых условиях после инокуляции сосуды помещали на поверхность почвы, влажные камеры в полевых условиях не создавались.

Оценку патогенности жидкой культуры штамма проводили на целых растениях. Штамм культивировали на модифицированной среде Чапека в стационарных условиях в течение 7 суток. Содержимое колб растирали в фарфоровой ступке, процеживали через мельничный газ и опрыскивали растения при помощи пульверизатора (Коломбет, 2006, [1]). В жидкой культуре штамм образовывал пикниды со спорами, концентрация спор в КЖ составила 1x106 спор/мл, концентрация мицелия 10 мг/мл.

Состав модифицированной среды Чапека

KH2PO4 -1 г

KCl - 0.5 г

MgSO4 - 0.5 г

Глюкоза - 20 г

Пептон - 1 г

Дрожжевой экстракт - 5 г

Вода - 1 л

Учет проводили на 2-7, 14 и 21 сутки после инокуляции. Определяли площадь пораженной поверхности каждого листа растения по 0-6-балльной шкале (0=нет симптомов, 1=0-5%; 2=6-25%; 3=26-75%; 4=76-95%; 5>95%; 6=гибель листа). Площадь пораженной поверхности растения определяли по формуле: 2.5xn1+15xn2+50xn 3+85xn4+97.5xn5+100xn6 /N, nx - число листьев с данным баллом, N - общее число листьев (Pfirter, Defago, 1998 [7]).

Штамм проявляет высокую патогенность для борщевика Сосновского. На 7 сутки после обработки растений в контролируемых условиях споровой суспензией штамма при 24 ч продолжительности росяного периода и концентрации инокулюма 6×107 спор/мл интенсивность развития заболевания превысила 45%, а при обработке мицелиальной суспензией составила более 60%. В полевых условиях обработка растений мицелиальной суспензией штамма приводила к 40% поражению растений (табл.4, 5, 6).

Жидкая культура штамма, включающая мицелий, споры и культуральную жидкость, была высоко агрессивна для растений борщевика Сосновского и приводила при 48 ч продолжительности периода повышенной влажности к 75% поражению растений на 7 сутки (табл.7).

Пример 3. Пример оценки специфичности штамма.

Из листьев растений пробочным сверлом вырезали диски диаметром 1 см. Диски помещали рядами нижней стороной вверх по 12 штук в пластиковые контейнеры на увлажненную стерильной водой фильтровальную бумагу. В центр каждого листового диска при помощи автоматической пипетки помещали каплю (объемом 10 мкл) споровой суспензии гриба. Контейнер накрывали крышкой и помещали на 24 часа в термостат (24°C), а затем выставляли на светоустановку. Диаметр некрозов измеряли на 3 и 7 сутки после инокуляции (Berestetskiy et al., 2007 [3]).

Оценено 37 видов растений из 20 семейств (Apiaceae, Asteraceae, Brassicaceae, Caryophyllaceae, Convolvulaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae, Lamiaceae, Onagraceae, Oxalidaceae, Plantaginaceae, Poaceae, Polemoniaceae, Polygonaceae, Ranunculaceae, Rosaceae, Rubiaceae, Scrophulariaceae, Solanaceae, Violaceae).

Phoma complanata характеризуется узкой специализацией и приуручен к семейству Apiaceae. Из представителей семейства Apiaceae штамм был патогенен для Heracleum sosnowskyi и Petroselinum sativum, а также в слабой степени для Aegopodium podagraria и Angelica sylvestris. Среди видов других семейств отмечено незначительное поражение Aquilegia vulgaris, Digitalis purpurea, Brassica rapa, Raphanus sativus (табл.8).

Таблица 1 Влияние источников азота и углерода на рост и развитие Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) Источник C или N Диаметр колоний, мм Интенсивность спороношения, спор/см2 Морфология колоний На 7 суткиНа 14 сутки Мочевина 56.2±2.1 87.8±1.3(7.2±1.4)×10 6Войлочные, сверху светло-бежевые, снизу светло-оливковые с крапинами, пикниды немногочисленные преимущественно по периферии колонии Аспарагин 53.2±1.190.0 (10.7±4.2)×10 6Войлочные, сверху и снизу светло-бежевые, пикниды немногочисленные, равномерно рассеянные Пептон64.3±0.8 90.0 (9.1±0.7)×106 Зернисто-волосистые, сверху и снизу светло-оливковые, пикниды многочисленные, равномерно рассеянные NaNO348.5±0.4 85.011.4 (9.8±3.6)×106 Клочковато-войлочные, сверху и снизу светло-бежевые с крапинами многочисленных пикнид, расположенных по периферии колонии NH4 NO312.2±0.6 20.7±1.3 (3.7±1.7)×105 Войлочные, сверху белые, снизу светло-оливковые, край зубчатый Сахароза 50.7±4.3 82.6±1.2(2.8±1.4)×10 5Войлочные, сверху светло-бежевые, снизу бледно-коричневые с крапинами пикнид, расположенных по краю колонии Мальтоза58.7±0.8 90.0 (5.5±1.8)×106 Клочковато-войлочные, сверху и снизу светло-бежевые, с крапинами пикнид, расположенных по краю колонии Лактоза49.5±1.4 84.2±2.1 (7.6±2.9)×106 Войлочно-клочковатые, сверху и снизу светло-бежевые с крапинами немногочисленных равномерно рассеянных пикнид Рамноза63.0±1.0 90.0 (5.3±2.6)×105 Клочковато-войлочные, сверху и снизу светло-бежевые с крапинами немногочисленных рассеянных пикнид Арабиноза52.5±2.2 88.4±0.7 (17.4±7.7)×106 Клочковато-войлочные, сверху светло-бежевые, снизу светло-охряные с крапинами немногочисленных равномерно рассеянных пикнид Глюкоза 58.0±0.690.0 (14.1±2.9)×10 6Клочковато-войлочные, сверху и снизу бежевые с крапинами многочисленных рассеянных пикнидГалактоза 48.8±2.1 86.0±3.1(1.2±0.4)×10 6Войлочные, сверху и снизу светло-бежевые, с крапинами многочисленных пикнид, расположенных преимущественно по краю колонии Манит53.5+2.0 90.0 (14.6±2.1)×106 Клочковатые, сверху и снизу светло-бежевые с крапинами многочисленных рассеянных пикнид

Таблица 2 Влияние температуры на рост Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) на картофельно-сахарозной агаризованной среде Температура, °C Диаметр колоний, мм На 7 суткиНа 14 сутки 7 17.9±0.345.811.0 16 67.5±0.290.0 20 84.2±0.890.0 24 53.7±1.190.0 28 29.3±4.9Не измер. 32 00

Таблица 3 Интенсивность спороношения Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) на зерновых субстратах при различных источниках освещения Освещение Интенсивность спороношения, спор/г субстрата ПшеноПерловая крупа Овсяная крупа Люминесцентное (6.2±3.0)×10 9(13.7±3.5)×10 9(6.8±3.0)×10 9Эритемное (6.6±0.8)×10 9(8.7±2.9)×10 9(13.7×2.2)×10 9Без освещения(19.6±18.9)×10 9(5.9±1.7)×10 9(7.2±0.9)×10 9

Таблица 4 Влияние продолжительности периода повышенной влажности на патогенность споровой суспензии Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) для растений борщевика Сосновского Продолжительность периода повышенной влажности, ч Степень поражения растений, % На 3 суткиНа 7 сутки На 14 сутки 0 01.9±1.1 1.9±1.1 6 24.7±13.933.5±16.5 19.4±10.0 24 16.±+8.848.0±7.5 46.8±7.1 48 35.6±14.348.6±8.0 42.8±10.8 Контроль 00 8.3±8.3

Таблица 5 Патогенность мицелиального инокулюма Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) для растений борщевика Сосновского в контролируемых условиях Вариант Степень поражения растений, % Ha 1 суткиНа 2 сутки На 4 сутки На 7 суткиНа 14 сутки 20 мг/мл 10.3±3.227.7±5.2 56.2±7.1 64.1±2.852.6±5.5 50 мг/мл 19.3±6.539.8±9.3 80.6±10.6 76.8±10.669.6±2.0 75 мг/мл 26.3±5.842.0±7.8 72.2±7.8 62.6±3.154.7±7.4 100мг/мл 35.8±7.052.2±10.4 78.2±9.7 64.9±12.869.8±4.6 Контроль вода0 0 2.8±1.525.0±15.6 39.6±6.25

Таблица 6 Патогенность мицелиального инокулюма Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) для растений борщевика Сосновского в полевых условиях Вариант Степень поражения растений, % На 1 суткиНа 2 сутки На 4 сутки На 7 суткиНа 14 сутки 75 мг/мл 0 7.0±4.510.8±1.7 45.3±3.8 61.6±8.2 100 мг/мл<1 8.4±3.3 30.4±8.639.6±13.8 69.9±3.2 Контроль вода 0 00 <15.3±4.0

Таблица 7 Патогенность жидкой культуры Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) для растений борщевика Сосновского в контролируемых условиях Вариант Степень поражения растений, % На 2 суткиНа 7 сутки На 14 сутки На 21 сутки 32.121 21.4±3.475.1±5.8 61.0±10.7 55.0±8.6 Контроль0 016.918.4 15.2±7.7

Таблица 8 Специализация Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) Семейство Вид растенияВремя учета, сутки1.40 (ВИЗР) Apiaceae Aegopodium podagraria 3<1 7 1.2±0.5 Angelica sylvestris 32.0 7 2.0 Coriandrum sativum 30 71.0±0.5 Daucus sativus3 0 7<1 Petroselinum sativum3 1.3±0.6 73.2±1.2 Heracleum sosnowskyi 32.0±0.5 7 3.3±1.4 Asteraceae Calendula officinalis 30 70 Cirsium arvense3 0 70 Lactuca sativa3 0 70 Sonchus arvensis3 0 70 Taraxacum officinale 30 7 0 Tussilago farfara 30 70 Brassicaceae Brassica rapa3 0 71.0±0.4 Raphanus sativus3 0 71.0±0.3 Caryophyllaceae Lychnis chalcedonica 30 70 Convolvulaceae Convolvulus arvensis 30 70 Cucurbitaceae Cucumis sativus3 0 70 Cucurbita pero3 0 70 Fabaceae Lupinus polyphyllus 30 70 Pisum sativum3 0 70 Lamiaceae Mentha piperita3 0 70 Galeopsis tetrachit 30 70 Origanum vulgare3 0 70 70 Onagraceae Epilobium angustifolium 30 70 Oenothera glazioviana 30 70 Oxalidaceae Oxalis corniculata 30 7<1 Plantaginaceae Plantago major3 07 0 Poaceae Triticum aestivum 30 70 Polemoniaceae Phlox paniculata3 0 70 Polygonaceae Rumex acetosa3 0 70 Ranunculaceae Aquilegia vulgaris 31.7±0.4 7 1.7±0.4 Rosaceae Fragaria vesca3 0 70 Geum rivale3 0 70 RubiaceaeGalium boreale 3 0 7 <1 Scrophulariaceae Digitalis purpurea 31.0±0.5 7 1.0±0.5 SolanaceaeSolanum tuberosum3 <1 7 He учит. Violaceae Viola canina3 0 70

Таким образом, приведенные данные свидетельствуют в сравнении с прототипом о высокой специализации Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР), позволяющей применять его для борьбы с борщевиком Сосновского в посевах большинства культурных растений, на пастбищах и охраняемых природных зонах. В то время как штаммы фитопатогена Sclerotinia sclerotiorum могут применяться только в посевах зерновых культур и злаковых трав. Кроме того, из данных следует высокая агрессивность гриба Phoma complanata штамм 1.40 (ВИЗР) в отношение борщевика Сосновского, сопоставимая, а в контролируемых условиях и превышающая биологическую активность взятого за прототип штамма Sclerotinia sclerotiorum.

Литература

1. Коломбет Л.В. Научное обоснование и практическая реализация технологии создания грибных препаратов для защиты растений от болезней // Автореф. дисс. д.б.н. Москва, 2006. 47 с.

2. Наумов Н.А. Методы микологических и фитопатологических исследований. М.-Л.: Госиздат колхозной и совхозной литературы, 1937, 272 с.

3. Berestetskiy А.О., Fyodorova A.F., Kustova S. A laboratory technique for the evalution of pathogenicity of Septoria cirsii for Cirsium arvense, XV Congress of European mycologists, 2007, p.242.

4. Boerema G.H., de Gruyter J., Noordeloos M.E., Hamers M.E.C. Phoma identification manual, CABI Publishing, 2004, 470 p.

5. de Voogd В., de Jong M., Nielsen C. Use of Sclerotinia sclerotiorum as a mycoherbicide to control the spread of giant hogweed (Heracleum mantegazzianum) in the Netherlands and Denmark. Manuscript cross-posted to Botanical Electronic News, no. 318, and International Bioherbicide Group Newsletter (IBG Newsletter). 2003. Vol.12, no. 2.11.

6. Erneberg M., Strandberg В., Jensen B.D. Susceptibility of a plant invader to a pathogenic fungus: An experimental study of Heracleum mantegazzianum and Sclerotinia sclerotiorum. In: L.E.Child, J.H.Brock, G.Brundu, K.Prach, P.Pysek, P.M.Wade and M.Williamson (eds.) Plant Invasions: Ecological Threats and Management Solutions. Backhuys Publishers, Leiden, The Netherlands. 2003. P.355-372.

7. Pfirter H., Defago G. The potential of Stagonospora sp. as a mycoherbicide for field bindweed // Biocontrol Science and technology. 1998. 8. P.93-101.

8. Seier M., Evans H. Fungal pathogens associated with Heracleum mantegazzianum in its native and invaded distribution range. In: P.Pysek, M.J.W.Cock, W.Nentwig, H.P.Ravn (eds.) Ecology and management of giant hogweed (Heracleum mantegazzianum). CABI UK Center (Ascot) Silwood Park, Buckhurst Road, Ascot, Berkshire SL5 7 ТА, UK. 2007. 25 p.

Формула изобретения

Штамм гриба Phoma complanata (Tode) Desm. 1.40 (ВИЗР), обладающий микогербицидной активностью против борщевика Сосновского.





Популярные патенты:

2405306 Способ определения содержания крахмала по содержанию глюкозы с учетом индивидуального коэффициента пересчета в растительном материале

... способ позволяет более точно определять количество крахмала в растительном материале, сравнительно прост, быстр и надежен. 1 табл. Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано в селекции и семеноводстве крахмалосодержащих растений (картофеля, луковичных, бобовых и злаковых культур) для выявления сортовых и видовых отличий, а также оценки качества сырья по содержанию крахмала для пищевой, винокуренной и фармацевтической промышленности.Аналогами способа определения крахмала по содержанию глюкозы в растительном материале являются методики: 1. Определение крахмала в растениях методом кислотного гидролиза: Практикум по агрохимии. // Под редакцией Ягодина ...


2165141 Тепличный гидропонный комплекс

... двери, стенки вегетационных отсеков до уровня размещения растений закрыты светонепроницаемым материалом, в вентиляционных форточках, установленных в вегетационных отсеках с возможностью их открывания наружу, размещена мелкоячеистая сетка, а каждая из установок для выращивания растений выполнена в виде параллельных рядов размещенных с продольным наклоном жестких рам с расположенными под ними U-образными лотками для питательного раствора, а над ними - посадочными крышками с зафиксированными в них растениями, каждая из жестких рам одним из своих концов закреплена шарнирно на станине с возможностью опускания до касания другим своим концом бетонного полового покрытия, в пространстве ...


2477044 Искусственная рыболовная приманка (варианты)

... спрятанный в хвостовой части корпуса, или шумовой шарик, или капсулу, или шарик с глазком или цветной капелькой, или капсулу с ароматизатором, или любую другую деталь, перекрывающую хвостовую часть корпуса поперек.9. Искусственная рыболовная приманка по п.7, отличающаяся тем, что в корпусе приманки выполнен продольный сквозной канал. 10. Искусственная рыболовная приманка по п.7, отличающаяся тем, что в корпусе приманки закреплен офсетный крючок или крючок джиг-головки.11. Искусственная рыболовная приманка по п.7, отличающаяся тем, что поверхность корпуса имеет выступы произвольной формы, расположенные в несколько рядов, для смазки корпуса ...


2270545 Посевной комбинированный агрегат

... установлены между катками и имеют форму щелевого дозатора; прикатывающий каток имеет возможность перевода в поднятое над поверхностью почвы положение посредством гидроцилиндра; кинематическая связь между катками выполнена в виде цепной передачи с передаточным отношением, равным обратной величине отношения где d1 - диаметр катка с деформаторами почвы; d2 - диаметр катка с ребрами;h - глубина формируемой деформаторами ложбины(RU, патент №2226324. С1. МПК7 А 01 В 49/06. Посевной комбинированный агрегат / С.А.Корпушов, В.И.Петров, А.М.Салдаев, А.Г.Терюков (RU). - Заявка №2002123087/12; Заявлено 28.08.2002; Опубл. 10.04.2004, Бюл. №10 // Изобретения. Полезные модели. - 2004. - №10). ...


2167510 Способ и устройство для изготовления круглых тюков соломы или подобного материала с пленочным защитным покрытием

... что отрывание пленки осуществляют с помощью прерывания вращения подающего рулона с пленкой во время непрерывного вращения круглого тюка. 3. Устройство для осуществления заворачивания круглого тюка способом по п. 1, выполненное в виде дополнительного блока со средствами установки на сенном прессе, собирающем скошенную солому в круглые тюки, включающее удерживающее средство для поддерживания при вращении подающего рулона с пленкой, отличающееся тем, что средства для установки соединены с направляющими и управляющими средствами для перемещения вверх/вниз удерживающего средства, предназначенными для осуществления первоначальной подачи пленки в зону забора слоя соломы, а направляющие и ...


Еще из этого раздела:

2281637 Способ производства зеленого корма при возделывании в орошаемом земледелии и устройство для его осуществления

2502793 Масло, семена и растения подсолнечника с модифицированным распределением жирных кислот в молекуле триацилглицерина

2144756 Селекционная сеялка для посева семян в кассеты

2400960 Ориентирующее устройство для корнеплодов конической формы

2464765 Сепарирующее устройство корнеклубнеуборочной машины

2067798 Агромостовой комплекс

2196403 Почвообрабатывающий модуль

2490849 Способ переработки безподстилочного помета птиц клеточного содержания и навоза свиней в топливные брикеты

2400042 Высевающий аппарат

2142696 Способ выращивания цветочных и декоративных растений в тепличных и домашних условиях