Способ получения генетически модифицированных растений картофеля сорта голубизна с помощью agrobacterium tumefaciensПатент на изобретение №: 2231551 Автор: Стародубцева А.М. (RU), Белоусова М.Б. (RU), Конов А.Л. (RU), Скрябин К.Г. (RU) Патентообладатель: Центр "Биоинженерия" РАН (RU), Стародубцева Анастасия Михайловна (RU), Белоусова Мария Борисовна (RU), Конов Алексей Львович (RU), Скрябин Константин Георгиевич (RU) Дата публикации: 27 Ноября, 2003 Начало действия патента: 24 Апреля, 2002 Адрес для переписки: 121165, Москва, Г-165, а/я 15, ООО "ППФ-ЮСТИС", пат.пов. А.Е.Груниной, рег. № 401 Изображения  Изобретение относится к селекции растений. Экспланты растений картофеля сорта Голубизна сокультивируют с трансформированным штаммом A. tumefaciens, а затем помещают на питательную среду для инициации каллусообразования с последующей регенерацией из них фертильных трансгенных растений. Сокультивирование осуществляют контактированием эксплантов с фильтром, наложенным на поверхность агаризованной среды, с нанесенной на нее с бактериальной суспензией в течение 48  4 часа. Для инициации каллусообразования эксплантов используют питательную среду, содержащую БАП в количестве 2,5 5,5 мг/л и НУК - 0,010,05 мг/л. Регенерацию начинают на восьмой день на среде, содержащей БАП в количестве 2,55,5 мг/л и ГКз - 0,010,05 мг/л. В результате увеличивается выход трансформированных растений. 4 з.п. ф-лы, 2 ил., 7 табл.
Изобретение относится к селекции и биотехнологии растений, в частности генной инженерии. Изобретение может быть использовано для получения генетически модифицированных растений картофеля сорта Голубизна, экспрессирующего различные гетерологичные гены.Способ получения трансгенных растений картофеля сорта Голубизна заключается в генетической трансформации сегментов стебля (эксплантов) in vitro культивируемых растений картофеля методом сокультивирования с Agrobacterium tumefaciens, несущей рекомбинантные плазмиды с селективными, маркерными и полезными генами, и в последующей регенерации до фертильных трансгенных растений, имеющих внесенные гены и сохраняющих все признаки исходного сорта.Картофель (Solanum tuberosum var. tuberosum) выращивается в России повсеместно, практически во всех климатических зонах. Относительно высокая продуктивность при известной простоте возделывания позволяет картофелю стабильно занимать второе место после злаковых культур в отечественном сельскохозяйственном производстве. Сегодня более 90% товарного картофеля производится в личных подсобных хозяйствах (ЛПХ), а для наименее обеспеченных слоев населения картофель находится на первом месте в рационе питания.Таким образом, проблема получения стабильного урожая картофеля является одной из важнейших. В России решение этой проблемы осложняется рядом неблагоприятных факторов, среди которых основное место занимают потери урожая от болезней, вредителей и сорной растительности.Первые работы по трансформации картофеля были начаты в восьмидесятых годах XX века [Ooms G., Hooykaas P.J.J., van Veen R.J.M., van Bellen P., Regensburg-Tuink T.J.G., Schilperoort R.A. Plasmid 1985 7: 15-29], и в 1986 году впервые была показана возможность получения картофеля с использованием Agrobacterium tumefaciens [An G., Watson B.D., Chiang C.C. Plant Physiology, 1986, v.81, p.301-305], сотрудниками Центра "Биоинженерия" РАН в 1990-1992 г.г. [Глагоцкая Т.Ц., Шульга О.А., Сидоров В.А., Захарьев В.М., Скрябин К.Г., Глеба Ю.Ю. ДАН СССР 314, №5, с.1240-1242, 1990, Feher A., Skryabin K.G., Balazs E., Preiszner J., Shulga O.A., Zakharyev V.M., Dudits D. Plant Cell Reports, 1992, v.ll, p.48-52].За первыми попытками последовало более 200 работ, многие из которых посвящены модификации и оптимизации процедуры трансформации [Tavazza R., Tavazza М., Ordas R.J., Ancora G., Benvenuto E. Plant Science, 1988. v.59, p.175-181; Snyder G.W. & Belknap W.R. Plant Cell Reports, 1993, v.l2, p.324-327]. Миновав первый этап разработки и освоения методов трансформации, к настоящему моменту во многих странах перешли к этапу внедрения полученных результатов в производство, что в свою очередь обусловило переход от работы с модельными легко трансформируемыми генотипами к коммерческим генотипам (сортам). Однако подавляющее большинство коммерческих сортов картофеля, включая и основные российские сорта, не относится к легко трансформируемым.Несмотря на усилия по созданию единой эффективной методики трансформации такая система трансформации для различных генотипов (сортов) до сих пор не создана. При необходимости получения модифицированных растений трудно трансформируемых коммерческих сортов приходится проводить оптимизацию протокола для каждого генотипа [Wordragen M.F. & Dons H.J.M. Plant Molecular biology reporter, 1992, v.l0(l), p.l2-36].Наиболее близким к предложенному является способ получения генетически модифицированных растений [Гулина И.В. Создание трансгенных растений картофеля, экспрессирующих модифицированный ген  -эндотоксина из В. thuringiensisvar tenebrionis. Диссертация, М., 1994, с.9, б-ка Института молекулярной биологии им. В.А.Энгельгардта].Стеблевые сегменты картофеля получали из растений, выращенных асептически в течение четырех недель на среде S1, и переносили их в жидкую среду MS. Ночную культуру штамма Agrobactenum tumefaciens добавляли к стеблевым сегментам, находящимся в чашке Петри в 10 мл жидкой среды MS таким образом, чтобы соотношение культуры штамма Agrobacterium и среды инкубирования составляло 1:20. Сокультивирование штамма Agrobacterium и стеблевых сегментов растений картофеля проводили в течение 16-18 часов при 28 С в темноте. По окончании инкубации сегменты переносили на среду MS, содержащую агар в концентрации 0,7%. Через трое суток сегменты переносили на среду MSV с фитогормонами состава: 0,2 мг/л НУК, 1 мг/л зеатина, 0,02 мг/л ГК3, 1 мг/л БАП, соли MS, 0,7% агар, 100 мкг/мл цефотаксима, 200 мкг/мл карбенициллина, 50 мкг/мл канамицина. Регенеранты переносили на среду S1, содержащую селективный агент и цефотаксим, чтобы предупредить агробактериальное заражение растений. Этот способ получения генетически модифицированных растений картофеля осуществляется следующим образом (модификация известного метода Horsch R.B., Rogers S.G., Fraley R.T. Transgenic plants. Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 1985; 50:433-7).Данная методика не является эффективной для картофеля сорта Голубизна.В ближайшем аналоге раскрыта методика получения трансгенного картофеля на примере другого сорта. По мнению авторов заявки и большинства специалистов в данной области процессы регенерации и трансформации растений являются генотипзависимыми, то есть эффективность и возможность получения положительного результата во многом определяются самим генотипом (в данном случае - сортом).Из этого следует, что для достижения высокой эффективности необходимо заново подобрать все условия (параметры) регенерации -трансформации для каждого конкретного сорта (генотипа).Авторы использовали методику для сорта Голубизна и получили низкую эффективность регенерации и трансформации (эти цифры приведены ниже).Задачей изобретения является создание эффективной методики трансформации растений картофеля сорта Голубизна.Технический результат изобретения заключается в повышении эффективности трансформации данного генотипа.Развитие биотехнологии привело к переходу от фундаментальных работ к решению практических задач сельского хозяйства, фармацевтики, медицины. Для решения таких задач возникает проблема не просто получения трансгенного растения, а получения достаточного (по разным оценкам от сотен до нескольких тысяч) количества первичных трансгенных растений - индивидуальных трансформационных событий, среди общего пула которых возможно будет выбрать удовлетворяющие всем требованиям селекционеров - оригинаторов (трансгенное растение не должно отличаться от исходного по сортовым характеристикам), требованиям биобезопасности (стабильности введенной вставки в геноме в поколениях и т.д.), требованиям пищевой безопасности (генетически модифицированное не должно отличаться от исходного растения по пищевым и токсикологическим характеристикам). Таким образом, чем большее количество первичных трансгенных растений будет получено, тем быстрее и эффективнее будет решена конкретная задача.Эффективность трансформации, понимаемая как отношение количества первичных трансгенных растений (для которых подтверждено наличие вставки в геноме) к общему количеству полученных регенерантов, напрямую зависит от эффективности регенерации, которая определяется как отношение количества полученных регенерантов (среди них могут быть как трансгенные, так и “пустые” не трансгенные растения) к количеству эксплантов (то есть к количеству затраченного исходного материала). Оба показателя обычно представляют в процентах.Технический результат достигается тем, что в способе получения генетически модифицированных растений картофеля, заключающемся в сокультивировании эксплантов со штаммом Agrobacterium tumefaciens, несущим рекомбинантные плазмиды с селективными маркерными и полезными генами, помещении эксплантов на питательную среду для инициации каллусообразования и последующей регенерации до фертильных трансгенных растений, имеющих внесенные гены и признаки исходного сорта, сокультивацию эксплантов картофеля сорта Голубизна предпочтительно осуществлять путем раскладывания эксплантов на бумажном фильтре, накрывающем поверхность агаризованной питательной средой с равномерно нанесенной на ней разведенной суспензией штамма Agrobacterium или смоченном разведенной суспензией штамма Agrobacterium, и выдержки в течение 48В±4 часов при 18-21CВ±1C, для инициации каллусообразования используют питательную среду, содержащую БАЛ в количестве 2,55,5 мг/л и НУК в количестве 0,01-0,05 мг/л, а на среду для регенерации, содержащую БАП в количестве 2,2-5,5 мг/л и ГК3 в количестве 0,010,05 мг/л, экспланты переносят на восьмой день.Для подготовки штамма Agrobacterium целесообразно его предварительно засевать штрихом на питательную среду на 30,5 суток в темноте при 24-29С, за двое суток до сокультивации засевают полученной смесью колоний первую ночную культуру штамма Agrobacterium в питательной среде, за одни сутки до сокультивации засевают вторую ночную культуру путем внесения в питательную среду первой ночной культуры, в день сокультивации концентрируют ночную культуру, то есть осаждают и разводят осадок в жидкой среде.Кроме того, после сокультивации отмывку эксплантов предпочтительно осуществлять путем помещения эксплантов в раствор, содержащий жидкую среду и антибиотик, подавляющий развитие штамма Agrobacterium, на 5-10 минут при комнатной температуре.В другом варианте после помещения эксплантов в раствор отмывку можно проводить с использованием ротационной качалки.Перечень графических материалов.На фиг.1 приведена карта плазмиды pBI121.На фиг.2 приведен пример электрофоретического анализа продуктов ПНР на препаратах ДНК модифицированных линий сорта Голубизна (негатив).Дорожки:1,18 - маркер молекулярной массы GeneRuler Fermentas, 100 bp;2, 3, 4, 7, 8, 13 - ПНР на препаратах ДНК растений, в которых не обнаружена трансгенная вставка;5, 6, 9, 10, 11, 12, 14 - ПЦР на препаратах ДНК растений, в которых обнаружен перенесенный ген thau II;15 - ПЦР на препарате ДНК растений исходного нетрансформированного сорта Голубизна;16 - продукт ПЦР на плазмидной ДНК (0,1 нг/реакцию), использованной для трансформации растений;17 - ПЦР в отсутствие ДНК-матрицы (контроль качества реакционной смеси).Способ получения генетически модифицированных растений картофеля сорта Голубизна осуществляется следующим образом.Данный протокол рассчитан на постановку одного трансформационного эксперимента исходя из среднего количества исходных материнских растений - 100В±10 шт. Среднее количество эксплантов - 500В±50 шт.Культура исходных растений: исходные растения, свободные от вирусной и вироидной инфекции, культивировали в асептических условиях в культуре in vitro. Для этого стебли исходных растений нарезали на черенки с одной пазушной почкой и культивировали в вегетационных сосудах на питательной среде, содержащей минеральные соли и витамины (например, среда Msbase, табл.1) при температуре +18-22С1С в дневное и +15-18СВ±1С в ночное время; фотопериодичности 16 часов день/8 часов ночь (освещенность 120  E) 3-5 недель.Подготовку штамма Agrobacterium проводили следующим способом.Засевали штамм Agrobacterium tumefaciens штрихом на питательную среду (например, среда LB, табл.4) на 3В±0,5 суток в темноте при +25-28СВ±1С.За два дня до планируемой трансформации засевали смесью колоний первую (I) ночную культуру штамма Agrobacterium объемом 1-6 мл В±0,2 в питательной среде (например, среда LB, табл.4) при +25-28СВ±1С, 100-14010 об/мин.За день до сокультивации засевали вторую (II) ночную культуру объемом 5-103 мл. Для этого вносили в питательную среду (например, среда LB, табл.4) ночную культуру I в количестве 1/100 от конечного объема ночной культуры I. Культивировали при +25-28СВ±1С, 100-14010 об/мин.Первый день трансформации1. Концентрировали ночную культуру II, осадив при 3,5-5В±0,5 тыс. об./мин в течение 3-10В±1 мин. Разводили полученный осадок в 3-101 мл жидкой среды (например, среда СМ, табл.1).2. Нарезали стебель на сегменты без пазушных почек длиной 5-10В±2 мм.3. Сокультивация:Вариант I. Заливали чашки Петри небольшим количеством (4-51 мл) питательной среды (например, среда Msbase, табл.1), наносили разведенную суспензию штамма Agrobacterium 300-500В±100 равномерно по поверхности агара, сверху накрывали бумажным фильтром, экспланты раскладывали на фильтре для сокультивации на 48В±4 часов при 18-22СВ±1С.Вариант II. В чашки Петри помещали стерильные бумажные фильтры, равномерно смачивали их небольшим количеством разведенной бактериальной суспензии (1-3В±0,5 мл), экспланты раскладывали на влажном фильтре для сокультивации на 48В±4 часов при 18-22СВ±1С.В контрольном варианте использовали вместо суспензии штамма Agrobacterium такое же количество жидкой питательной среды (например, среда СМ, табл.1).4. Отмывка эксплантов:Вариант I. Помещали экспланты в раствор (1550В±10 мл), содержащий жидкую среду (например, среда Msbase, табл.1) и раствор антибиотика, подавляющего развитие штамма Agrobacterium, на 10-305 минут при комнатной температуре (18-20СВ±1С).Вариант II. Экспланты в растворе жидкой среды и антибиотика, приготовленном как в варианте I, отмывали с использованием ротационной качалки (шейкера) при 50-7010 об/мин в течение 15-30В±10 минут при комнатной температуре (18-20СВ±1С).Третий день трансформацииПосле сокультивации (включая этап отмывки, когда она необходима) помещали экспланты на питательную среду (например, среда CIM, табл.1) для инициации каллусообразования.Использовали в питательной среде для инициации каллусообразования: БАП в концентрации от 3 до 5В±0,5 мг/л и НУК в концентрации от 0,02 до 0,04В±0,01 мг/л.Восьмой деньПереносили экспланты на чашки со средой для регенерации (например, среда RM, табл.1) с добавлением селективного агента, выбранного в зависимости от используемой генетической конструкции.Для тестирования эффективности процесса регенерации в контрольных вариантах использовали среду для регенерации без добавления селективного агента (например, среда RM, табл.1).Использовали в питательной среде для регенерации: БАП в концентрации от 3 до 5В±0,5 мг/л и ГК3 в концентрации от 0,02 до 0,04В±0,01 мг/л.Через каждые 14 днейПереносили экспланты на свежие чашки Петри со средой для регенерации того же состава.При появлении регенерантовСрезали регенеранты и переносили их в пробирки, содержащие среду для укоренения (например, среда RIM, табл.1).Первичные регенеранты, укоренившиеся на селективной среде, считали прошедшими первичный отбор.Далее прошедшие отбор первичные регенеранты проверяли на наличие перенесенной генетической конструкции при помощи ПЦР-анализа с праймерами, специфичными для кодирующей области трансгенной конструкции. Уровень экспрессии целевого гена проверяли при помощи иммуноферментного анализа [Towbin H., Staehelin Т., Gordon J. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1979, v. 76(9): 4350-4].Эффективность регенерации для предлагаемого способа составила 174,5% по сравнению с 95,6% для способа по ближайшему аналогу.Эффективность трансформации в целом составила 22,2% по сравнению с 14,7% для способа по ближайшему аналогу.Экспериментальный пример использования патентуемого способа получения трансгенных растений картофеля сорта ГолубизнаЭксперимент по получению трансгенных растений картофеля сорта Голубизна, экспрессирующих ген thou II суперсладкого белка из тропического растения Thaumatococcus danielli.Культура исходных растений: исходные растения, свободные от вирусной и вироидной инфекции в количестве 98 шт. культивировали в асептических условиях в культуре in vitro. Для этого стебли исходных растений нарезали на черенки с одной пазушной почкой и культивировали в вегетационных сосудах на питательной среде, содержащей минеральные соли и витамины (среда Msbase, табл.1) при температуре +18-21СlC в дневное и +15-18СВ±1С в ночное время; фотопериодичности 16 часов день/8 часов ночь (освещенность 120 E) 4 недели.Для трансформации использовали штамм Agrobacterium tumefaciens СВЕ 121, содержащий плазмиду рВI121 (фиг.1), в состав кассеты экспрессии которой входят генетические конструкции:промотор pNOS - ген NPTII - NOS-T терминатор 35S промотор-ген than II- NOS Т терминатор.Подготовку штамма A. tumefaciens СВЕ 121 проводили следующим образом. Засевали штамм A. tumefaciens СВЕ 121, штрихом на питательную среду LB (табл.4) содержащую селективные антибиотики рифампицин и канамицин в концентрации 25 мг/л и 50 мг/л соответственно, на 30,5 суток в темноте, при +26СВ±1С.За два дня до планируемой трансформации засевали смесью колоний первую (I) ночную культуру штамма A. tumefaciens СВЕ 121 объемом 6 мл 0,2 в питательной среде среда LB (табл.4), содержащей селективные антибиотики рифампицин и канамицин в концентрации 25 мг/л и 50 мг/л соответственно, при +26СВ±1С, 100-140В±10 об/мин.За день до сокультивации засевали вторую (II) ночную культуру объемом 61 мл. Для этого вносили в питательную среду LB (табл.4), содержащую селективные антибиотики рифампицин и канамицин в концентрации 25 мг/л и 50 мг/л соответственно, ночную культуру I в количестве 1/100 от конечного объема. Культивировали при +26С1С, 100-140В±10 об/мин.Первый день трансформацииКонцентрировали ночную культуру II, осадив при 3,5В±0,5 тыс. об/мин в течение 3В±1 мин. Разводили полученный осадок в 5В±1 мл жидкой среды (среда СМ, табл.1).Нарезали стебель на сегменты без пазушных почек длиной 5-10В±2 мм.Для проведения этапа сокультивации заливали чашки Петри небольшим количеством (5В±1 мл) питательной среды (например, среда Msbase, табл.1), наносили разведенную суспензию штамма Agrobacterium 20010 мкл равномерно по поверхности агара, сверху накрывали бумажным фильтром, экспланты раскладывали на фильтре для сокультивации на 48В±4 часов при 18-22СВ±1С.В контрольном варианте вместо суспензии штамма A. tumefaciens СВЕ 121 использовали такое же количество жидкой питательной среды (среда СМ, табл.1).После проведения этапа сокультивации экспланты не отмывали, так как это не было необходимо.Третий день трансформацииПосле сокультивации помещали экспланты на питательную среду (среда CIM, табл.1) для инициации каллусообразования.Использовали в питательной среде для инициации каллусообразования: БАП в концентрации от 5В±0,01 мг/л и НУК в концентрации от 0,02В±0,001 мг/л.Восьмой деньПереносили экспланты на чашки со средой RM для регенерации (среда RM, табл.1) с добавлением селективного агента антибиотика канамицина в концентрации 100 мг/л. В качестве селективного агента использовали антибиотик канамицин, так как генетическая конструкция содержит ген NPT II, кодирующий фермент неомицинфосфотранцферазу, экспрессия которого обеспечивает устойчивость к антибиотику канамицину.Для тестирования эффективности процесса регенерации в контрольных вариантах использовали среду для регенерации без добавления селективного агента (среда RM, табл.1).Использовали в питательной среде для регенерации: БАП в концентрации 5В±0,01 мг/л и ГК3 в концентрации 0,02В±0,001 мг/л.Через каждые 14 днейПереносили экспланты на свежие чашки Петри со средой для регенерации того же состава.При появлении регенерантовСрезали регенеранты и переносили их в пробирки, содержащие среду для укоренения (среда RIM, табл.1).Первичные регенеранты, укоренившиеся на селективной среде, содержащей антибиотик канамицин в концентрации 100 мг/л, считали прошедшими первичный отбор.Далее прошедшие отбор первичные регенеранты проверяли на наличие перенесенной генетической конструкции при помощи ПЦР-анализа с праймерами, специфичными для кодирующей области трансгенной конструкции. Для ПЦР-анализа генома растений на наличие гена thaull были использованы праймеры ThauF и ThauR, последовательность которых была сконструирована на основе данных генбанка о последовательности гена тауматина T.daniellii (gi|3319903|emb|AJ007626.1|СМУ7626) и промотора E35S (gi|170190|gb|J01209.1|TDATHAU2). Оба праймера находятся на расстоянии 907 нуклеотидов друг от друга.TF primer: 5'- СТG CCG ACA GTG GTC CCA AAG ATG GAC СС- 3'29 bp>gi|3319903|emb|AJ007626.1|CMV7626 Cauliflower mosaic virus 35S promoter with artifical insert of 80 bp Length = 423Score = 58.0 bits (29), Expect = 2e-07Identities = 29/29 (100%) Strand = Plus/MinusQuery: 1 ctgccgacagtggtcccaaagatggaccc 29Sbjct: 294 ctgccgacagtggtcccaaagatggaccc 266TR primer: 5'- CAG TAG GGC AGA AAG TGA CCC TGT AGT TG- 3' 29 bp>gi|170190|gb|J01209.1|TDATHAU2 T.daniellii preprothaumatin-2 mRNA, complete cds Length = 931Score =58.0 bits (29), Expect = 2e-07Identities = 29/29 (100%) Strand = Plus/MinusQuery: 1 cagtagggcagaaagtgaccctgtagttg 29Sbjct: 716 cagtagggcagaaagtgaccctgtagttg 688Методика проведения ПЦР - анализаПроведение ПЦР осуществляли на ДНК-амплификаторе Techne Genius. Центрифугирование осуществляли на настольной микроцентрифуге Eppendorf 5415C, с максимальной скорость вращения ротора 14000 об/мин. Термостатирование образцов осуществляли в сухом термостате “Термо 28-23”. Анализ продуктов ПЦР производили путем электрофореза в агарозном геле соответствующей концентрации при напряженности электрического поля 6 В/см с последующим окрашиванием гелей бромистым этидием (концентрация красящего раствора 1 мкг/мл в воде, время окрашивания - 20 минут при комнатной температуре) и фотографированием полученной картины в ультрафиолете (длина волны - 260-280 нм) на фотопленку “Микрат-Изопан” при помощи TTL-фотоаппарата типа “Зенит” (светофильтр КС-8). Ввод полученных данных электрофореза в компьютер осуществляли посредством прямого сканирования негативов на сканере Mustek 9600. Обработку оцифрованной информации проводили при помощи пакета Adobe Photoshop 5.0.Состав реакционной смеси для ПЦР:- Праймеры - по 25 пМ каждого;- 10 буфер - 2,5 мкл;- 2 мМ dNTP - 2,5 мкл;- BioTaq полимераза 5Е мкл - 0,5 мкл;- ДНК-матрица - 100 нг;- Н2O - до 25 мкл.В табл. 5 приведены наименования и происхождение препаратов.Условия проведения ПНР были выбраны следующие: 43 цикла: 94С - 5 сек, 55С - 5 сек, 72С - 20 сек, окончательная полимеризация -7 минут.Появление продукта ПЦР с указанными праймерами и длиной 907 нуклеотидов при условии отсутствия его в реакциях, поставленных на контрольной ДНК, свидетельствовало о присутствии искомого гена в геномной ДНК анализируемой линии.Иммуноферментный анализ белка тауматин IIТкани трансформированных и контрольных растений замораживали в жидком азоте и разрушали растиранием в ступке. К полученным лизатам добавляли однократный буфер нанесения для SDS-электрофореза и разделяли растительные белки вместе с маркерными по Лэмми [Laemmli, 1970]. Фракционные белки электрофоретически переносили на нитроцеллюлозную мембрану и проводили иммунное проявление по Тоубину [Towbin et al., 1979]. Полученные блоты инкубировали со специфическими антителами против белка тауматин II, затем с антикроличьими антителами, конъюгированными с пероксидазой. Для визуализации сигналов на блотах их обрабатывали раствором диаминобензидина с перикисью водорода. Для количественной детекции белка тауматин II одновременно с исследуемыми образцами на форез наносили образцы с известной концентрацией белка тауматин II. После иммуноблотинга количество белка в исследуемых образцах определяли путем сравнения интенсивности сигналов с сигналами контрольных образцов.Результаты эксперимента по получению трансгенных растений картофеля сорта Голубизна, экспрессирующих ген thau IIВ результате проведения данного трансформационного эксперимента (по описанному выше протоколу) было получено 787 регенерантов из 451 эксплантов от 98 исходных растений. Для сорта Голубизна отмечено явление каллусообразования и регенерации с обеих сторон экспланта. Таким образом, эффективность регенерации (процентное отношение количества регенерантов к количеству эксплантов) составила 174,4%.Последующий после получения регенерантов и первичного отбора на селективной среде первичный молекулярный анализ методом ПНР (фиг.2) подтвердил наличие перенесенного гена thau И в геноме 175 растений, следовательно, эффективность трансформации (процентное отношение трансформантов к количеству регенерантов) составила 22,2%.Дальнейший молекулярно-биологический анализ выявил различия в уровнях экспрессии белка тауматин II в полученных трансгенных линиях картофеля сорта Голубизна (табл.6)В период с 15 июня 2001 по 20 сентября 2001 года на сертифицированном МВК ГИД участке ВНИИ Фитопатологии РАСХН, пос. Б. Вяземы, Московская обл., были проведены ограниченные полевые испытания отобранных трансгенных линий картофеля сорта Голубизна, экспрессирующих ген белка тауматин II.Были высажены 140 растений трансгенных линий (и.т.с.) сорта Голубизна, также были высажены 30 контрольных нетрансформированных растений сорта Голубизна. В конце вегетационного периода были получены клубни всех трансгенных линий.Урожайность трансгенных линий (и.т.с.) оценивали по следующим показателям: средняя масса клубней, г/куст и среднее количество клубней на куст. Статистическую обработку полученных данных проводили при помощи пакета программ Statistica 5.5. Математический анализ урожайности контрольных и трансгенных линий (и.т.с.) картофеля показал, что между трансгенными и контрольными растениями нет существенных различий по показателям урожайности, т.к. уровень значимости (вероятность существенности различий) (см. табл.7) не превысил ни по одному показателю 95%.В результате проведения полевых испытаний было отобрано 8 трансгенных линий (и.т.с.) сорта Голубизна, экспрессирующих ген белка тауматин II. Отобранные линии жизнеспособны и фенотипически не отличаются от контрольных нетрансформированных растений исходного сорта. Для приготовления сред, представленных в табл.1, готовили раствор MS-солей в деионизованной воде, доводя pH до значения 5,6-5,80,1 с помощью растворов 1N KOH и 1N HCl. Стерилизацию сред осуществляли в автоклаве при 1 атм, 121C в течение 20 минут. После охлаждения среды до +4550C добавляли витамины (табл.2), гормоны, антибиотики и селективные агенты (методика приготовления и концентрации стоков, см. табл.3) соответственно составу сред и заливали в чашки Петри ( 9 см) по 205 мл среды в каждую.         
Формула изобретения1. Способ получения генетически модифицированных растений картофеля, заключающийся в сокультивировании эксплантов со штаммом Agrobacterium tumefaciens, несущим рекомбинантные плазмиды с селективными, маркерными и полезными генами, помещении эксплантов на питательную среду для инициации каллусообразования и последующей регенерации до фертильных трансгенных растений, имеющих внесенные гены и признаки исходного сорта, отличающийся тем, что для инициации каллусообразования эксплантов картофеля сорта Голубизна используют питательную среду, содержащую БАП в количестве 2,5-5,5 мг/л и НУК в количестве 0,01-0,05 мг/л, а регенерацию начинают на восьмой день с использованием среды, содержащей БАП в количестве 2,5-5,5 мг/л, и ГКз в количестве 0,01-0,05 мг/л.2. Способ по п.1, отличающийся тем, что сокультивацию осуществляют путем раскладывания эксплантов на бумажном фильтре, накрывающем поверхность агаризованной питательной среды с равномерно нанесенной на ней разведенной суспензией штамма Agrobacterium tumefaciens или смоченном разведенной суспензией штамма Agrobacterium tumefaciens, и выдержки в течение (484) ч при (18-21)С1С.3. Способ по п.1 или 2, отличающийся тем, что для подготовки штамма Agrobacterium tumefaciens его предварительно засевают штрихом на питательную среду на (30,5) суток в темноте при 24-29С, за двое суток до сокультивации засевают полученной смесью колоний первую ночную культуру штамма Agrobacterium tumefaciens в питательной среде, за одни сутки до сокультивации засевают вторую ночную культуру путем внесения в питательную среду первой ночной культуры, в день сокультивации концентрируют ночную культуру, осаждают и разводят осадок в жидкой среде.4. Способ по любому из пп.1-3, отличающийся тем, что после сокультивации помещают экспланты в раствор, содержащий жидкую среду и антибиотик, подавляющий развитие штамма Agrobacterium tumefaciens, на 5-40 мин при комнатной температуре для отмывки эксплантов.5. Способ по пп.1-3, отличающийся тем, что помещают экспланты в раствор, содержащий жидкую среду и антибиотик, подавляющий развитие штамма Agrobacterium tumefaciens, и отмывают экспланты при комнатной температуре с использованием ротационной качалки в течение 5-40 мин.
MM4A Досрочное прекращение действия патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе Дата прекращения действия патента: 25.04.2005 Извещение опубликовано: 20.07.2006 БИ: 20/2006 NF4A Восстановление действия патента Российской Федерации на изобретение Извещение опубликовано: 27.08.2006 БИ: 24/2006 Популярные патенты: 2389173 Способ выращивания земляники садовой ... магнитной индукции бегущей последовательности, воздействующей на одно растение 5 при непрерывном механическом перемещении над ним, параллельно почве, вдоль ряда насаждения 6 индуктора 1, установленного на навесном устройстве 4 трактора 3.Обработку кустов земляники садовой проводили в фазы начала роста и цветения растений, используя следующие факторы:- три биологически активные частоты следования импульсов магнитной индукции равные 8,0; 12,8 и 16,0 Гц;- два значения чисел импульсов магнитной индукции бегущей последовательности, воздействующих на каждое растение, равные 32 и 64 импульсам; - два направления вектора магнитной индукции бегущей последовательности импульсов, ... 2086081 Рабочий орган культиватора ... крупяных культур крупноплодных сортов гречихи, проса и т.п. (B4=300 мм) также используют два профиля 2, но с вылетом A2 (фиг.16). Во всех вариантах свободной от обработки остается соответствующая защитная зона b1b2 и обеспечивается необходимое перекрытие ширины захвата плоскорежущих лап Da1, a2 В соответствии со схемой междурядной обработки посевов на стойке 1 устанавливают один или два [-образных профиля 2 с нижним расположением горизонтальной стороны 3 (при вылете A1) или 5 (вылет A2). Для этого движением сверху-вниз через головку стержня 12 на стойке 1 пропускают вырезы GKH и GKL (G"К"H" и G"K"L") соответственно на одной из горизонтальных 3 или 5 и вертикальной 4 сторонах профиля ... 2071371 Способ нагрева тканей животного и устройство для его осуществления ... по фазе на 180o, то после деления частоты в два раза фазовый сдвиг между сигналами на выходах 21 и 17 устройства 16 составит 90o. Временные диаграммы работы фазирующего устройства 16 представлены на фиг.9, где обозначены: 53 напряжение на входе триггера 43; 54 напряжение на входе триггера 42; 55 напряжение на выходе 17; 56 напряжение на выходе 21. С выхода 17 устройства 16 сигнал частотой 40, 68 мГц поступает на вход 18 генератора УВЧ 11, а с выхода 21 устройства 16 сигнал с частотой 40, 68 мГц и со сдвигом фазы на 90o поступает на вход 20 усилителя мощности 19. Как уже отмечалось ранее, максимум амплитуды возбуждения излучателя 3 соответствует наиболее глубокому прогреванию ... 2444769 Жидкостный резервуар, устройство наблюдения для наблюдения под поверхностью жидкости и оптическая пленка ... как у прозрачного окна. Материал для защитного слоя можно надлежащим образом выбирать из материалов, имеющих показатель преломления, по существу, такой же, как у жидкости. В частности, первый микрорельефный слой обеспечивает совместимость показателя преломления с прозрачным окном, и защитный слой обеспечивает такую же совместимость с жидкостью. В результате, показатель преломления может непрерывно изменяться от жидкости к прозрачной стенке, благодаря чему отражение окружающего света на внешней поверхности окна можно заметно уменьшить (например, коэффициент отражения 0,1% или менее).По тем же причинам, что и в варианте осуществления 1, устройство наблюдения варианта ... 2064741 Устройство для обработки почвы ... При этом устройства внедрения воздействуют на рабочие органы 10, поворачивая их вокруг шарнира их крепления к гусеничному обводу 6, в направлении вращения ведущего колеса 9. Клинья рабочих органов внедряются в почву. Выступ 25 раздвигает почву во время внедрения до необратимых деформаций, снижая трение поверхности клина о почву. Затем элементы выглубления рабочих органов, перемещая их совместно с элементами гусеничной цепи, выглубляют клинья из почвы, разрушая почвенный монолит в сторону разрыхленного другими рабочими органами участка. Одновременно с лекалами в рабочее положение переводятся агрегатируемые с устройством для обработки почвы сельхозмашины, необходимые для комплексной ... |
Еще из этого раздела: 2257713 Способ производства пестицида (варианты) 2039429 Линия производства молочных продуктов 2027346 Лесозаготовительная машина 2248687 Способ весеннего боронования озимых культур и зубовая борона для его осуществления 2056755 Способ регулирования роста овощных культур 2415552 Питатель молотилки зерноуборочного комбайна 2215407 Способ создания исходного материала для селекции растений 2265300 Способ борьбы с нежелательной порослью топинамбура 2250602 Широкозахватный колесный дождеватель 2217912 Способ проведения контрольного лова молоди пелагических рыб, в частности лососевых, и обкидной невод |
Изобретения в сельском хозяйстве
Обработка почвы в сельском и лесном хозяйствах
Посадка, посев, удобрение
Уборка урожая, жатва
Обработка и хранение продуктов полеводства и садоводства
Садоводство, разведение овощей, цветов, риса, фруктов, винограда, лесное хозяйство
Новые виды растений или способы их выращивания
Производство молочных продуктов
Животноводство, разведение и содержание птицы, рыбы, насекомых, рыбоводство, рыболовство
Поимка, отлов или отпугивание животных
Консервирование туш животных, или растений или их частей
Биоцидная, репеллентная, аттрактантная или регулирующая рост растений активность химических соединений или препаратов
Хлебопекарные печи, машины и прочее оборудование для хлебопечения
Машины или оборудование для приготовления или обработки теста
Обработка муки или теста для выпечки, способы выпечки, мучные изделия
|
|
||